| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 前言 | 第7-17页 |
| 材料与仪器 | 第17-19页 |
| 1. 材料与试剂 | 第17-18页 |
| 2. 实验仪器 | 第18-19页 |
| 实验方法 | 第19-31页 |
| 1. 重组人IDO(rhIDO)表达及纯化 | 第19-21页 |
| 2. rhIDO生物活性测定 | 第21-26页 |
| 2.1 rhIDO活性检测体系建立 | 第21-22页 |
| 2.2 抑制类型测定 | 第22页 |
| 2.3 抑制常数Ki及IC_(50)值测定 | 第22-24页 |
| 2.4 细胞水平IDO抑制活性测定 | 第24-26页 |
| 3. T细胞增殖反应 | 第26-27页 |
| 4. LLC荷瘤小鼠实验 | 第27-28页 |
| 4.1 LLC荷瘤小鼠模型建立 | 第27页 |
| 4.2 实验分组 | 第27页 |
| 4.3 IDO 活性（Kyn/Trp)检测 | 第27-28页 |
| 5. DPPH实验 | 第28页 |
| 6. SPR实验 | 第28-29页 |
| 7. Transwell实验检测细胞的运动侵袭能力 | 第29-31页 |
| 实验结果 | 第31-41页 |
| 1. rhIDO的表达与纯化 | 第31页 |
| 2. IDO活性检测体系的建立 | 第31-32页 |
| 3. HEK 293细胞瞬转rhIDO的鉴定 | 第32-33页 |
| 4. 色胺酮类IDO抑制剂的筛选 | 第33-35页 |
| 4.1 TQ系列化合物IDO抑制活性的初筛 | 第33页 |
| 4.2 TQ系列化合物抑制类型判定及Ki、IC_(50)的测定 | 第33页 |
| 4.3 TQ系列化合物细胞水平的IDO抑制效果 | 第33-35页 |
| 5. TQ系列化合物对T淋巴细胞增殖影响 | 第35-36页 |
| 6. TQ系列化合物的体内抗肿瘤作用 | 第36-39页 |
| 6.1 TQ系列化合物对LLC荷瘤小鼠肿瘤生长的影响 | 第36-38页 |
| 6.2 TQ系列化合物对LLC荷瘤小鼠体内IDO活性影响 | 第38-39页 |
| 7. 色胺酮类化合物作用于IDO的分子机制 | 第39-40页 |
| 7.1 CX系列化合物的氧化还原性 | 第39页 |
| 7.2 CX系列化合物与IDO结合作用 | 第39-40页 |
| 8. CX系列化合物体外抗肿瘤转移的作用 | 第40-41页 |
| 实验讨论 | 第41-43页 |
| 结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-51页 |
| 附录 | 第51-52页 |
| 硕士期间科研成果 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
