| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第17-46页 |
| 1.1 前言 | 第17-18页 |
| 1.2 碳点的基本性质 | 第18-24页 |
| 1.2.1 碳点的组成，形貌及表面性质 | 第18页 |
| 1.2.2 碳点的溶解性 | 第18-19页 |
| 1.2.3 碳点的紫外吸收 | 第19页 |
| 1.2.4 碳点的荧光性质 | 第19-21页 |
| 1.2.5 碳点的上转换发光性质 | 第21-22页 |
| 1.2.6 磷光性质 | 第22-23页 |
| 1.2.7 电化学发光性质 | 第23页 |
| 1.2.8 化学发光性质 | 第23页 |
| 1.2.9 生物特性 | 第23-24页 |
| 1.3 碳点的制备 | 第24-35页 |
| 1.3.1 碳源材料的选择 | 第24-25页 |
| 1.3.2 制备技术分类 | 第25-29页 |
| 1.3.2.1 电弧放电法 | 第25页 |
| 1.3.2.2 激光消融法 | 第25页 |
| 1.3.2.3 电化学法 | 第25-26页 |
| 1.3.2.4 化学氧化法 | 第26页 |
| 1.3.2.5 水热/溶剂热合成法 | 第26-27页 |
| 1.3.2.6 微波辅助合成法 | 第27-28页 |
| 1.3.2.7 超声合成法 | 第28页 |
| 1.3.2.8 直接热解法 | 第28-29页 |
| 1.3.2.9 等离子体法 | 第29页 |
| 1.3.3 定向制备技术 | 第29-34页 |
| 1.3.3.1 尺寸控制及组分分离技术 | 第29-31页 |
| 1.3.3.2 杂原子掺杂 | 第31-33页 |
| 1.3.3.3 碳点的表面修饰 | 第33-34页 |
| 1.3.4 碳点复合物的制备 | 第34-35页 |
| 1.4 碳点在荧光分析中的应用 | 第35-43页 |
| 1.4.1 金属离子检测 | 第36-37页 |
| 1.4.2 非金属离子检测 | 第37-38页 |
| 1.4.3 有机小分子检测 | 第38-42页 |
| 1.4.3.1 抗生素/农药残留 | 第38-39页 |
| 1.4.3.2 有机污染物/染料 | 第39-40页 |
| 1.4.3.3 生物小分子 | 第40-41页 |
| 1.4.3.4 药物 | 第41-42页 |
| 1.4.4 生物大分子检测 | 第42页 |
| 1.4.5 其它检测 | 第42-43页 |
| 1.5 本论文的研究意义和主要内容 | 第43-46页 |
| 第二章 微波辅助法快速制备碳点并用于人体血清中组氨酸，半胱氨酸或谷胱甘肽的检测 | 第46-64页 |
| 2.1 前言 | 第46-47页 |
| 2.2 实验部分 | 第47-49页 |
| 2.2.1 实验试剂和药品 | 第47页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第47-48页 |
| 2.2.3 水溶性CDs的制备 | 第48页 |
| 2.2.4 荧光量子产率的测定 | 第48-49页 |
| 2.2.5 荧光检测Hg~(2+)和GSH，Cys，His | 第49页 |
| 2.2.6 人体血清样品的处理和检测 | 第49页 |
| 2.3 结果和讨论 | 第49-62页 |
| 2.3.1 CDs的制备和表征 | 第49-54页 |
| 2.3.1.1 CDs的快速制备 | 第49-50页 |
| 2.3.1.2 CDs的形貌和结构表征 | 第50-52页 |
| 2.3.1.3 CDs的光学性质表征 | 第52-53页 |
| 2.3.1.4 CDs的稳定性 | 第53-54页 |
| 2.3.2 荧光猝灭及恢复 | 第54-61页 |
| 2.3.2.1 溶液p H的影响 | 第54-56页 |
| 2.3.2.2 Hg~(2+)对CDs荧光的猝灭 | 第56-58页 |
| 2.3.2.3 CDs-Hg~(2+)体系的荧光恢复 | 第58-61页 |
| 2.3.3 选择性研究 | 第61-62页 |
| 2.3.4 实际样品检测 | 第62页 |
| 2.4 小结 | 第62-64页 |
| 第三章 不相溶体系制备高量子产率碳点，并用于p H的检测 | 第64-79页 |
| 3.1 前言 | 第64-65页 |
| 3.2 实验部分 | 第65-66页 |
| 3.2.1 实验试剂和药品 | 第65页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第65页 |
| 3.2.3 CDs的制备 | 第65页 |
| 3.2.4 CDs荧光量子产率（QY）的测定 | 第65-66页 |
| 3.2.5 CDs的应用 | 第66页 |
| 3.2.5.1 绘制隐形图案 | 第66页 |
| 3.2.5.2 pH的检测 | 第66页 |
| 3.3 结果和讨论 | 第66-78页 |
| 3.3.1 CDs的制备机理 | 第66-68页 |
| 3.3.2 CDs的制备条件的优化 | 第68-69页 |
| 3.3.2.1 碳源的选择 | 第68页 |
| 3.3.2.2 初始加入水的量 | 第68-69页 |
| 3.3.2.3 Oct量的影响 | 第69页 |
| 3.3.3 CDs的形貌及结构表征 | 第69-71页 |
| 3.3.4 CDs的光学性质表征 | 第71-75页 |
| 3.3.5 CDs的应用 | 第75-78页 |
| 3.3.5.1 制作荧光隐形墨水 | 第75-76页 |
| 3.3.5.2 pH的检测 | 第76-78页 |
| 3.3.5.3 实际样品的pH测定 | 第78页 |
| 3.4 小结 | 第78-79页 |
| 第四章 固相法制备高荧光量子产率黄绿色发光的N掺杂碳点，并用于Fe3+和F-的检测 | 第79-100页 |
| 4.1 前言 | 第79-80页 |
| 4.2 实验部分 | 第80-81页 |
| 4.2.1 实验试剂和药品 | 第80页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第80页 |
| 4.2.3 黄绿色荧光的N-CDs的制备 | 第80-81页 |
| 4.2.4 检测Fe3+ | 第81页 |
| 4.2.5 检测F- | 第81页 |
| 4.3 结果和讨论 | 第81-99页 |
| 4.3.1 N-CDs制备条件的优化 | 第81-83页 |
| 4.3.2 N-CDs的结构和组成 | 第83-85页 |
| 4.3.3 N-CDs的光学性质 | 第85-87页 |
| 4.3.4 N-CDs的制备机理 | 第87-94页 |
| 4.3.5 荧光检测Fe3+ | 第94-97页 |
| 4.3.6 荧光检测F- | 第97-98页 |
| 4.3.7 水样中F-的检测 | 第98-99页 |
| 4.4 小结 | 第99-100页 |
| 第五章 无模板微波辅助法制备碳点/Zn(OH)_2复合材料用于Hg~(2+)和Cu~(2+)的分离和检测 | 第100-120页 |
| 5.1 前言 | 第100-101页 |
| 5.2 实验部分 | 第101-103页 |
| 5.2.1 实验试剂和药品 | 第101-102页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第102页 |
| 5.2.3 CDs/Zn(OH)_2复合物的制备 | 第102页 |
| 5.2.4 荧光检测 | 第102-103页 |
| 5.3 结果和讨论 | 第103-119页 |
| 5.3.1 CDs/Zn(OH)_2复合物的制备条件优化 | 第103-104页 |
| 5.3.2 CDs/Zn(OH)_2复合物的表征 | 第104-107页 |
| 5.3.2.1 形貌表征 | 第104-105页 |
| 5.3.2.2 XRD，红外以及热重表征 | 第105-106页 |
| 5.3.2.3 XPS表征 | 第106-107页 |
| 5.3.3 CDs/Zn(OH)_2复合物的制备机理 | 第107-108页 |
| 5.3.4 CDs/Zn(OH)_2复合物的荧光性质 | 第108-109页 |
| 5.3.5 荧光检测Cu~(2+)和Hg~(2+) | 第109-118页 |
| 5.3.5.1 猝灭平衡时间的优化 | 第109-111页 |
| 5.3.5.2 溶液p H的选择 | 第111页 |
| 5.3.5.3 线性范围和检出限 | 第111-112页 |
| 5.3.5.4 猝灭机理 | 第112-116页 |
| 5.3.5.5 重复利用性和选择性 | 第116-118页 |
| 5.3.6 分离和吸附性能研究 | 第118页 |
| 5.3.7 实际水样检测 | 第118-119页 |
| 5.4 小结 | 第119-120页 |
| 第六章 微波辅助法快速制备碳点-分子印迹复合材料，并用于牛奶中四环素类抗生素的荧光检测 | 第120-136页 |
| 6.1 前言 | 第120-121页 |
| 6.2 实验部分 | 第121-123页 |
| 6.2.1 实验试剂和药品 | 第121页 |
| 6.2.2 实验仪器 | 第121页 |
| 6.2.3 CDs的制备 | 第121-122页 |
| 6.2.4 CDs@MIPs和CDs@NIPs的制备 | 第122页 |
| 6.2.5 荧光测试 | 第122页 |
| 6.2.6 牛奶样品预处理 | 第122-123页 |
| 6.3 结果和讨论 | 第123-135页 |
| 6.3.1 CDs@MIPs的制备 | 第123-124页 |
| 6.3.2 制备条件的优化 | 第124-125页 |
| 6.3.2.1 氨水加入的速度 | 第124页 |
| 6.3.2.2 模板分子的加入量 | 第124-125页 |
| 6.3.2.3 聚合时间 | 第125页 |
| 6.3.3 CDs和CDs@MIPs的表征 | 第125-127页 |
| 6.3.4 CDs@MIPs的荧光性质 | 第127-128页 |
| 6.3.5 Tc荧光测试 | 第128-131页 |
| 6.3.5.1 平衡时间的选择 | 第129页 |
| 6.3.5.2 pH的选择 | 第129页 |
| 6.3.5.3 线性范围和检出限 | 第129-131页 |
| 6.3.6 重复利用率 | 第131页 |
| 6.3.7 选择性研究 | 第131-133页 |
| 6.3.8 实际牛奶样品分析 | 第133-135页 |
| 6.4 小结 | 第135-136页 |
| 第七章 结论 | 第136-138页 |
| 参考文献 | 第138-162页 |
| 附录 | 第162-165页 |
| 作者简介 | 第162-163页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文及取得的研究成果 | 第163-165页 |
| 致谢 | 第165页 |
