| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10页 |
| 主要英文缩写词 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-43页 |
| 第一节 内耳及毛细胞的结构和发育过程 | 第13-22页 |
| 1.1 内耳的构成 | 第13-14页 |
| 1.2 耳蜗毛细胞与声音传导 | 第14-15页 |
| 1.3 内耳及耳蜗毛细胞的发育 | 第15-16页 |
| 1.4 耳蜗毛细胞的来源 | 第16页 |
| 1.5 耳蜗毛细胞发育与多种信号通路调控 | 第16-20页 |
| 1.6 耳蜗毛细胞发育相关的重要基因 | 第20-21页 |
| 1.7 未来研究展望 | 第21-22页 |
| 第二节 FoxG1在其它组织中的作用及机制研究 | 第22-36页 |
| 2.1 FoxG1生物信息学背景 | 第22页 |
| 2.2 FoxG1在其它组织中的功能 | 第22-30页 |
| 2.3 与FoxG1相关的信号通路或基因 | 第30-35页 |
| 2.4 未来研究展望 | 第35-36页 |
| 第三节 FoxG1对内耳发育的影响 | 第36-43页 |
| 3.1 FoxG1在内耳的表达 | 第36-37页 |
| 3.2 FoxG1缺失后对内耳表型的影响 | 第37-42页 |
| 3.3 结论与展望 | 第42-43页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第43-59页 |
| 第一节 实验材料和试剂 | 第43-47页 |
| 1.1 主要仪器 | 第43-44页 |
| 1.2 主要试剂 | 第44-45页 |
| 1.3 主要耗材 | 第45-46页 |
| 1.4 试剂配置 | 第46-47页 |
| 第二节 实验方法 | 第47-58页 |
| 2.1 小鼠基因型鉴定 | 第47-48页 |
| 2.2 成年小鼠耳蜗铺片免疫荧光 | 第48-49页 |
| 2.3 新生小鼠耳蜗铺片免疫荧光 | 第49页 |
| 2.4 小鼠耳蜗毛细胞流式分选 | 第49-50页 |
| 2.5 耳蜗毛细胞RNA提取 | 第50页 |
| 2.6 RT-PCR | 第50-56页 |
| 2.7 ABR检测 | 第56页 |
| 2.8 凋亡细胞TUNEL染色 | 第56-57页 |
| 2.9 实验小鼠的准备 | 第57页 |
| 2.10 统计学分析方法 | 第57-58页 |
| 第三节 实验路线 | 第58-59页 |
| 第三章 实验结果和讨论 | 第59-93页 |
| 第一节 FoxG1敲除后引起新生鼠耳蜗表型变化 | 第59-67页 |
| 1.1 Gfi-Cre小鼠的解析 | 第59页 |
| 1.2 Cre重组酶的重组活性鉴定 | 第59-60页 |
| 1.3 FoxG1敲除小鼠的构建 | 第60-62页 |
| 1.4 新生鼠耳蜗毛细胞中Cre酶对FoxG1敲除效率的解析 | 第62-63页 |
| 1.5 FoxG1缺失后P1小鼠耳蜗毛细胞的表型变化 | 第63-64页 |
| 1.6 FoxG1缺失后P7小鼠耳蜗毛细胞的表型变化 | 第64-65页 |
| 1.7 FoxG1缺失后对小鼠蜗管长度的影响 | 第65-67页 |
| 第二节 FoxG1敲除后对成年鼠耳蜗毛细胞存活的影响 | 第67-79页 |
| 2.1 FoxG1 KO小鼠出生后不同时期听力的变化 | 第67-68页 |
| 2.2 FoxG1缺失后P21-P45小鼠耳蜗毛细胞的表型变化 | 第68-72页 |
| 2.3 FoxG1缺失后P60-P120小鼠耳蜗毛细胞的表型变化 | 第72-74页 |
| 2.4 FoxG1缺失后P21-P45小鼠耳蜗毛细胞的凋亡检测 | 第74-76页 |
| 2.5 FoxG1缺失后P60-P120小鼠耳蜗毛细胞的凋亡检测 | 第76-79页 |
| 第三节 FoxG1敲除后毛细胞转录组测序分析 | 第79-93页 |
| 3.1 耳蜗毛细胞的流式分选 | 第79-80页 |
| 3.2 基因显著GO富集分析 | 第80-83页 |
| 3.3 信号通路相关基因表达差异分析 | 第83-89页 |
| 3.4 FoxG1缺失后对P1小鼠耳蜗毛细胞β-catenin表达影响 | 第89-91页 |
| 3.5 FoxG1缺失后对成年小鼠耳蜗毛细胞IGF信号通路及凋亡因子表达影响 | 第91-93页 |
| 第四章 小结与展望 | 第93-97页 |
| 参考文献 | 第97-110页 |
| 致谢 | 第110-111页 |
| 个人简介 | 第111-112页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文 | 第112页 |
