| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-24页 |
| 1.1 组织工程 | 第12-15页 |
| 1.1.1 种子细胞 | 第13页 |
| 1.1.2 组织工程支架 | 第13-14页 |
| 1.1.3 细胞与组织支架的复合 | 第14-15页 |
| 1.2 组织工程用生物材料 | 第15-16页 |
| 1.2.1 组织工程天然生物材料 | 第15页 |
| 1.2.2 组织工程用合成生物材料 | 第15-16页 |
| 1.3 静电纺丝技术用于组织支架的制备 | 第16-20页 |
| 1.3.1 静电纺丝技术 | 第16-17页 |
| 1.3.2 静电纺丝工艺 | 第17-18页 |
| 1.3.3 电纺纤维在组织工程的应用 | 第18-20页 |
| 1.4 课题的立题意义和研究内容 | 第20-24页 |
| 1.4.1 取向电纺纤维在细胞分选及细胞片层工程的应用 | 第20-21页 |
| 1.4.2 三维组织支架在组织工程中的应用 | 第21-24页 |
| 第二章 温敏纳米电纺纤维在细胞分选和取向细胞片层工程的应用 | 第24-40页 |
| 2.1 前言 | 第24-26页 |
| 2.2 实验部分 | 第26-30页 |
| 2.2.1 实验材料与仪器 | 第26-27页 |
| 2.2.2 PNIPA-NAS共聚物的制备 | 第27页 |
| 2.2.3 PNIPA-Gel电纺纳米纤维的制备 | 第27-28页 |
| 2.2.4 PNIPA-Gel的表征 | 第28-29页 |
| 2.2.4.1 PNIPA-NAS共聚物的结构表征 | 第28-29页 |
| 2.2.4.2 PNIPA-Gel高聚物及其纤维表面性能的表征 | 第29页 |
| 2.2.5 细胞的培养与染色 | 第29-30页 |
| 2.2.5.1 细胞的培养 | 第29页 |
| 2.2.5.2 细胞的染色 | 第29-30页 |
| 2.2.6 温敏PNIPA-Gel纳米纤维表面对共培养细胞的分选 | 第30页 |
| 2.2.7 细胞的取向生长和取向细胞片层的获得 | 第30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-39页 |
| 2.3.1 PNIPA-NAS 共聚物的合成与表征 | 第30-33页 |
| 2.3.1.1 PNIPA-NAS共聚物的合成 | 第30-31页 |
| 2.3.1.2 PNIPA-NAS共聚物的结构表征 | 第31-32页 |
| 2.3.1.3 PNIPA-NAS共聚物的温敏性表征 | 第32-33页 |
| 2.3.2 PNIPA-Gel的制备与表征 | 第33-35页 |
| 2.3.2.1 PNIPA-Gel的制备 | 第33-34页 |
| 2.3.2.2 PNIPA-Gel 的 DSC 测定 | 第34-35页 |
| 2.3.3 PNIPA-Gel电纺纳米纤维的表征 | 第35-36页 |
| 2.3.3.1 PNIPA-Gel电纺纳米纤维的SEM表征 | 第35页 |
| 2.3.3.2 PNIPA-Gel电纺纳米纤维表面接触角的测定 | 第35-36页 |
| 2.3.4 细胞分选 | 第36-37页 |
| 2.3.5 取向细胞片层的获得 | 第37-39页 |
| 2.4 本章小结 | 第39-40页 |
| 第三章 同步细胞电喷/聚脲型聚氨酯电纺组织工程支架的制备及应用 | 第40-71页 |
| 3.1 引言 | 第40-41页 |
| 3.2 实验部分 | 第41-52页 |
| 3.2.1 实验材料与仪器 | 第41-42页 |
| 3.2.2 聚氨酯的合成 | 第42-43页 |
| 3.2.3 PEUU聚氨酯的结构表征 | 第43页 |
| 3.2.3.1 特性黏度的测定 | 第43页 |
| 3.2.3.2 FTIR | 第43页 |
| 3.2.3.31H-NMR | 第43页 |
| 3.2.4 聚氨酯PEUU的性能表征 | 第43-45页 |
| 3.2.4.1 聚氨酯PEUU机械性能的测定 | 第43-44页 |
| 3.2.4.2 聚氨酯PEUU吸水率的测定 | 第44页 |
| 3.2.4.3 聚氨酯PEUU水解性能的测定 | 第44页 |
| 3.2.4.4 降解产物对细胞的毒性 | 第44-45页 |
| 3.2.5. 大鼠骨髓间质干细胞（r MSCs）的提取与表征 | 第45-46页 |
| 3.2.5.1 大鼠骨髓间质干细胞（r MSCs）的提取 | 第45页 |
| 3.2.5.2 MSCs 细胞表面分子的检测 | 第45-46页 |
| 3.2.6 聚氨酯电纺纤维的制备与表征 | 第46-48页 |
| 3.2.7 同步电喷电纺组织支架的制备及表征 | 第48-52页 |
| 3.2.7.1 不同条件下电喷细胞及其活性的检测 | 第48页 |
| 3.2.7.2 同步电喷细胞/电纺 PEUU 纤维组织支架的制备及表征 | 第48-50页 |
| 3.2.7.3 同步电纺 PEUU/电喷细胞纤维组织支架中细胞的生长情况 | 第50页 |
| 3.2.7.4 同步电纺 PEUU/电喷细胞纤维组织支架中细胞 DNA 含量的测定 | 第50页 |
| 3.2.7.5 RT-PCR 法测纤维组织支架中骨髓间充质干细胞多分化潜能 | 第50-52页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第52-69页 |
| 3.3.1 聚氨酯PEUU的合成与结构表征 | 第52-55页 |
| 3.3.1.1 聚氨酯PEUU的合成 | 第52-53页 |
| 3.3.1.2 聚氨酯PEUU的结构表征 | 第53-55页 |
| 3.3.2 聚氨酯PEUU的性能表征 | 第55-59页 |
| 3.3.2.1 聚氨酯PEUU膜的机械性能 | 第55页 |
| 3.3.2.2 聚氨酯PEUU膜的吸水率 | 第55-56页 |
| 3.3.2.3 聚氨酯PEUU膜的水解性能 | 第56-58页 |
| 3.3.2.4 聚氨酯PEUU水解液的细胞毒性试验 | 第58-59页 |
| 3.3.3 聚氨酯PEUU电纺纤维膜的制备与表征 | 第59-61页 |
| 3.3.3.1 聚氨酯PEUU电纺纤维膜的SEM表征 | 第59-60页 |
| 3.3.3.2 聚氨酯PEUU电纺纤维（e-PEUU）的机械性能 | 第60-61页 |
| 3.3.4 细胞在e-PEUU纤维上的生长 | 第61-63页 |
| 3.3.5 大鼠骨髓间质干细胞(rMSCs)表面分子的表征 | 第63-65页 |
| 3.3.6 电压对r MSCs细胞活性的影响 | 第65-66页 |
| 3.3.7 同步电纺PEUU/电喷细胞纤维组织支架静态培养细胞的生长情况 | 第66-67页 |
| 3.3.8 同步电纺PEUU/电喷细胞纤维组织支架中细胞dsDNA含量测定 | 第67-68页 |
| 3.3.9 QRT-PCR法检测纤维组织支架中骨髓间充质干细胞多分化潜能 | 第68-69页 |
| 3.4 本章小结 | 第69-71页 |
| 第四章 结论与展望 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 作者简介 | 第84页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文 | 第84页 |
