摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4页 |
主要符号对照表 | 第8-9页 |
第1章 前言 | 第9-21页 |
1.1 脂联素 | 第9-13页 |
1.1.1 脂联素的结构 | 第9页 |
1.1.2 脂联素的表达及调控 | 第9-10页 |
1.1.3 脂联素的组装和分泌 | 第10-12页 |
1.1.4 脂联素的功能和作用机制 | 第12-13页 |
1.2 AMPK | 第13-16页 |
1.2.1 AMPK的结构 | 第13-14页 |
1.2.2 AMPK的功能 | 第14-15页 |
1.2.3 AMPK的激活机制与AMPK激活剂 | 第15-16页 |
1.3 TBC1D1 | 第16-18页 |
1.3.1 TBC1D1基因和蛋白结构 | 第16页 |
1.3.2 TBC1D1的功能和作用机制 | 第16-17页 |
1.3.3 TBC1D1的磷酸化 | 第17-18页 |
1.4 女贞苷 | 第18-19页 |
1.5 研究目的和意义 | 第19-21页 |
第2章 实验材料与实验方法 | 第21-32页 |
2.1 实验材料 | 第21-24页 |
2.1.1 实验用细胞 | 第21页 |
2.1.2 实验试剂与药品 | 第21-23页 |
2.1.3 主要实验仪器 | 第23-24页 |
2.2 实验方法 | 第24-32页 |
2.2.1 基因定点突变 | 第24-25页 |
2.2.2 3T3-L1前体脂肪细胞培养与诱导分化 | 第25-26页 |
2.2.3 HEK293T细胞培养与转染 | 第26-27页 |
2.2.4 RNA干扰(RNAi) | 第27页 |
2.2.5 蛋白质印迹(Western Blotting) | 第27-29页 |
2.2.6 免疫共沉淀(co-immunoprecipitation,Co-IP) | 第29-30页 |
2.2.7 免疫荧光染色 | 第30页 |
2.2.8 高效液相色谱(HPLC) | 第30-31页 |
2.2.9 实验数据采集处理及统计学分析 | 第31-32页 |
第3章 女贞苷通过激活AMPK促进脂联素的高聚化 | 第32-39页 |
3.1 本章导论 | 第32页 |
3.2 女贞苷在HEK293T细胞中激活AMPK | 第32-33页 |
3.3 女贞苷通过提高细胞中AMP/ATP的比值激活AMPK | 第33-34页 |
3.4 女贞苷在 3T3-L1脂肪细胞中激活AMPK | 第34-35页 |
3.5 女贞苷在 3T3-L1成熟脂肪细胞中促进脂联素组装 | 第35-36页 |
3.6 女贞苷通过激活AMPK促进脂联素高聚化 | 第36-38页 |
3.7 本章小结 | 第38-39页 |
第4章 TBC1D1调控脂联素的高聚化 | 第39-52页 |
4.1 本章导论 | 第39页 |
4.2 TBC1D1在脂肪细胞中的表达 | 第39-40页 |
4.3 TBC1D1与脂联素的结合 | 第40-41页 |
4.3.1 HEK293T细胞中TBC1D1与脂联素的结合 | 第40-41页 |
4.3.2 3T3-L1成熟脂肪细胞中TBC1D1与脂联素的结合 | 第41页 |
4.4 TBC1D1对脂联素高聚体组装的影响 | 第41-46页 |
4.4.1 HEK293T中过量表达TBC1D1降低脂联素高聚化水平 | 第41-43页 |
4.4.2 3T3-L1成熟脂肪细胞中沉默TBC1D1降低脂联素高聚化水平 | 第43-44页 |
4.4.3 TBC1D1调控脂联素高聚化受上游信号通路介导 | 第44-46页 |
4.5 磷酸化的TBC1D1抑制脂联素高聚化 | 第46-47页 |
4.6 过表达TBC1D1磷酸化位点突变体降低脂联素的总量 | 第47-49页 |
4.7 脂联素和TBC1D1在HEK293T细胞中的亚定位 | 第49-50页 |
4.8 本章小结 | 第50-52页 |
第5章 讨论与展望 | 第52-55页 |
5.1 讨论 | 第52-54页 |
5.1.1 实验结果 | 第52-53页 |
5.1.2 TBC1D1在不同细胞中的作用 | 第53页 |
5.1.3 TBC1D1和脂联素的关系 | 第53-54页 |
5.1.4 TBC1D1磷酸化的检测 | 第54页 |
5.2 展望 | 第54-55页 |
5.2.1 优化AMPK激活剂筛选方法 | 第54页 |
5.2.2 研究TBC1D1和脂联素的相互作用 | 第54页 |
5.2.3 研究TBC1D1蛋白在脂肪细胞中的其他功能 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-62页 |
致谢 | 第62-64页 |
个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第64页 |