| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一章 研究背景 | 第12-34页 |
| 1.1 阿尔茨海默病概述 | 第12-13页 |
| 1.2 阿尔茨海默病发病机制概述 | 第13-20页 |
| 1.2.1 AD的基因学说 | 第13-14页 |
| 1.2.2 Aβ级联假说 | 第14-15页 |
| 1.2.3 Tau蛋白异常磷酸化假说 | 第15-17页 |
| 1.2.4 自噬障碍假说 | 第17页 |
| 1.2.5 神经再生障碍假说 | 第17-19页 |
| 1.2.6 其他假说 | 第19-20页 |
| 1.3 本实验中的动物模型 | 第20页 |
| 1.4 阿尔茨海默病的治疗策略 | 第20-29页 |
| 1.4.1 传统药物治疗 | 第20-24页 |
| 1.4.2 干细胞移植治疗 | 第24-27页 |
| 1.4.3 成体神经再生修复治疗 | 第27-29页 |
| 1.5 硒类药物在AD中的研究进展 | 第29-30页 |
| 1.6 本实验的研究目的与意义 | 第30-34页 |
| 第二章 材料与方法 | 第34-54页 |
| 2.1 实验材料 | 第34-40页 |
| 2.1.1 实验AD小鼠模型和药物 | 第34页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第34-37页 |
| 2.1.3 实验仪器设备 | 第37-38页 |
| 2.1.4 试剂配制 | 第38-40页 |
| 2.2 实验方法 | 第40-54页 |
| 2.2.1 NSC_s的获取鉴定 | 第40-45页 |
| 2.2.2 Se-Met对NSC_s增殖作用的影响 | 第45-50页 |
| 2.2.3 Se-Met对NSC_s分化的影响 | 第50-51页 |
| 2.2.4 动物实验检测Se-Met对脑内神经再生修复脑神经系统的影响 | 第51-53页 |
| 2.2.5 图像处理及统计学分析 | 第53-54页 |
| 第三章 实验结果 | 第54-78页 |
| 3.1 NSC_s的获取鉴定 | 第54-57页 |
| 3.1.1 NSC_s的获取及培养 | 第54-55页 |
| 3.1.2 流式细胞术分选NSC_s | 第55页 |
| 3.1.3 免疫荧光检测鉴定NSC_s | 第55-57页 |
| 3.2 Se-Met对NSC_s增殖作用的影响 | 第57-64页 |
| 3.2.1 CCK-8试剂盒检测Se-Met对NSC_s增殖的作用 | 第57-58页 |
| 3.2.2 BrdU免疫荧光检测Se-Met对NSC_s增殖的影响 | 第58页 |
| 3.2.3 形态学观察分析Se-Met对神经球生长的作用 | 第58-59页 |
| 3.2.4 免疫印迹检测Se-Met对NSC_s增殖作用 | 第59-64页 |
| 3.3 Se-Met对NSC_s分化的影响 | 第64-69页 |
| 3.3.1 形态学观察分析NSC_s分化作用 | 第64-66页 |
| 3.3.2 免疫印迹检测Se-Met对NSC_s分化的影响 | 第66-67页 |
| 3.3.3 免疫荧光检测Se-Met对NSC_s向神经元分化的影响 | 第67-68页 |
| 3.3.4 免疫荧光检测Se-Met对NSC_s向星形胶质细胞分化的影响 | 第68-69页 |
| 3.4 动物学实验检测Se-Met作用后脑内NSC_s对脑神经系统修复作用 | 第69-78页 |
| 3.4.1 免疫荧光检测Se-Met对脑内海马区NSC_s增殖的作用 | 第69-70页 |
| 3.4.2 BrdU免疫荧光检测Se-Met对脑内神经元增殖的影响 | 第70-71页 |
| 3.4.3 免疫印迹检测Se-Met对NSC_s增殖信号通路的作用 | 第71-76页 |
| 3.4.4 免疫荧光检测Se-Met对神经系统的修复作用 | 第76-78页 |
| 第四章 讨论 | 第78-86页 |
| 第五章 结论 | 第86-88页 |
| 第六章 参考文献 | 第88-94页 |
| 致谢 | 第94-96页 |
| 硕士期间研究成果 | 第96页 |
