| 致谢 | 第4-7页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| 1 文献综述 | 第8-13页 |
| 1.1 研究背景 | 第8-9页 |
| 1.1.1 我国玉米生产面临的社会问题 | 第8页 |
| 1.1.2 我国玉米生产面临的自然环境问题 | 第8-9页 |
| 1.2 蛋白磷酸酶的特性 | 第9-10页 |
| 1.2.1 蛋白磷酸酶的分类 | 第9页 |
| 1.2.2 蛋白磷酸酶的结构 | 第9页 |
| 1.2.3 蛋白磷酸酶的功能 | 第9-10页 |
| 1.3 蛋白磷酸酶PP6的功能 | 第10-13页 |
| 1.3.1 参与生长素的运输 | 第10-11页 |
| 1.3.2 PP6参与脱落酸信号转导 | 第11页 |
| 1.3.3 PP6参与细胞有丝分裂 | 第11页 |
| 1.3.4 PP6参与开花时间的控制 | 第11-13页 |
| 2 引言 | 第13-14页 |
| 3 材料和方法 | 第14-22页 |
| 3.1 试验材料及样品处理 | 第14页 |
| 3.2 菌株和载体 | 第14页 |
| 3.3 酶和试剂 | 第14页 |
| 3.4 引物设计及合成 | 第14-15页 |
| 3.5 RNA提取及cDNA合成 | 第15-16页 |
| 3.5.1 总RNA的提取 | 第15页 |
| 3.5.2 痕量DNA的去除 | 第15-16页 |
| 3.5.3 cDNA的合成 | 第16页 |
| 3.6 定量PCR检测ZmPP6C基因的表达量 | 第16-17页 |
| 3.7 玉米ZmPP6C的克隆 | 第17-21页 |
| 3.7.1 PCR扩增ZmPP6C基因 | 第17-18页 |
| 3.7.2 DNA片段回收 | 第18页 |
| 3.7.3 PCR产物连接与转化 | 第18-19页 |
| 3.7.4 质粒提取 | 第19页 |
| 3.7.5 PCR和酶切鉴定重组质粒 | 第19-20页 |
| 3.7.6 pZmPP6C-1A:GUS植物表达载体构建 | 第20-21页 |
| 3.8 玉米PP6C的基因序列比对、结构预测与进化树分析 | 第21-22页 |
| 4 结果与分析 | 第22-31页 |
| 4.1 ZmPP6C基因的克隆 | 第22-23页 |
| 4.1.1 ZmPP6C基因的克隆和检测 | 第22页 |
| 4.1.2 植物超表达载体p BI121-ZmPP6C的鉴定 | 第22-23页 |
| 4.1.3 pBI121-ZmPP6C在农杆菌GV3101中的检测 | 第23页 |
| 4.2 PP6C基因家族有着相同的结构域和序列高度一致性 | 第23-25页 |
| 4.3 ZmPP6C器官特异表达分析 | 第25-26页 |
| 4.4 ZmPP6C响应不同光质处理的表达模式分析 | 第26-28页 |
| 4.5 ZmPP6C的表达对长日和短日处理的响应 | 第28-29页 |
| 4.6 ZmPP6C的表达对胁迫处理的响应 | 第29-31页 |
| 5 结论与讨论 | 第31-34页 |
| 5.1 蛋白磷酸酶6亚基的氨基酸序列在进化上高度保守 | 第31页 |
| 5.2 ZmPP6C基因在玉米叶片中特异表达并响应不同光质处理 | 第31-32页 |
| 5.3 ZmPP6C基因受日照长短变化的影响 | 第32页 |
| 5.4 ZmPP6C基因受胁迫坏境条件的影响 | 第32-33页 |
| 5.5 结论 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-44页 |
| ABSTRACT | 第44-45页 |
