| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 缩略词 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-30页 |
| 1 微管骨架 | 第14-20页 |
| 1.1 微管的基本结构 | 第14-15页 |
| 1.2 微管体外聚合的动力学特性 | 第15-17页 |
| 1.3 微管骨架的阵列及调控因素 | 第17-20页 |
| 1.3.1 微管骨架的阵列 | 第17-18页 |
| 1.3.2 阵列的调控因素 | 第18-20页 |
| 2 植物微管蛋白 | 第20-23页 |
| 2.1 微管蛋白的结构及分类 | 第20-21页 |
| 2.2 微管蛋白的异质性 | 第21-22页 |
| 2.3 微管蛋白的生物起源 | 第22-23页 |
| 3 植物中的微管结合蛋白 | 第23-28页 |
| 3.1 微管稳定剂：MAP65和CLASP | 第23-25页 |
| 3.1.1 MAP65 | 第23-24页 |
| 3.1.2 CLASP | 第24-25页 |
| 3.2 微管去稳定蛋白家族 | 第25-26页 |
| 3.2.1 KIESIN | 第25页 |
| 3.2.2 KATANIN | 第25-26页 |
| 3.2.3 MAP18和MDP25 | 第26页 |
| 3.3 微管动态的启动子 | 第26-28页 |
| 3.3.1 EB1 | 第26-27页 |
| 3.3.2 SPR2蛋白 | 第27页 |
| 3.3.3 MAP215和MAP200蛋白 | 第27-28页 |
| 4 本研究的目的及意义 | 第28-30页 |
| 第二章 水稻OsMAP65家族成员在逆境胁迫下的表达分析 | 第30-39页 |
| 1 引言 | 第30页 |
| 2 材料与方法 | 第30-33页 |
| 2.1 材料 | 第30-31页 |
| 2.2 材料处理 | 第31页 |
| 2.3 总RNA的提取 | 第31-32页 |
| 2.3.1 磨样 | 第31页 |
| 2.3.2 总RNA的提取 | 第31-32页 |
| 2.4 RNA样品的纯度检测 | 第32页 |
| 2.5 RNA样品的完整性检测 | 第32-33页 |
| 2.5.1 RNA电泳原理 | 第32页 |
| 2.5.2 RNA样品的完整性检测方法 | 第32-33页 |
| 3 水稻OsMAP65家族成员的半定量RT-PCR表达分析 | 第33-36页 |
| 3.1 cDNA第一链的合成 | 第33-34页 |
| 3.2 序列分析 | 第34-35页 |
| 3.3 水稻OsMAP65家族成员的半定量RT-PCR表达 | 第35-36页 |
| 4 结果与分析 | 第36-37页 |
| 4.1 盐胁迫下水稻OsMAP65家族成员的半定量RT-PCR表达 | 第36-37页 |
| 4.2 干旱胁迫下水稻OsMAP65家族成员的半定量RT-PCR表达 | 第37页 |
| 5 讨论 | 第37-39页 |
| 第三章 水稻OsMAP65家族的T-DNA插入突变体的鉴定 | 第39-47页 |
| 1 引言 | 第39页 |
| 2 材料与方法 | 第39-46页 |
| 2.1 实验材料 | 第39页 |
| 2.2 处理方法 | 第39-41页 |
| 2.2.1 MS培养基所需试剂 | 第39-40页 |
| 2.2.2 MS培养基制备所需仪器 | 第40页 |
| 2.2.3 MS培养基制备 | 第40页 |
| 2.2.4 MS培养基育苗 | 第40-41页 |
| 2.3 CTAB法小量提取水稻基因组DNA | 第41-43页 |
| 2.3.1 材料 | 第41页 |
| 2.3.2 试剂 | 第41-42页 |
| 2.3.3 仪器 | 第42页 |
| 2.3.4 实验步骤 | 第42-43页 |
| 2.4 水稻T-DNA插入突变植株的鉴定 | 第43-45页 |
| 2.5 实验结果及分析 | 第45-46页 |
| 3 讨论 | 第46-47页 |
| 第四章 水稻OsMAP65家族的T-DNA插入突变体的表型和农艺性状调查 | 第47-52页 |
| 1 引言 | 第47页 |
| 2 材料与方法 | 第47-48页 |
| 2.1 实验材料 | 第47页 |
| 2.2 T-DNA插入纯合突变体植株的表型观察 | 第47页 |
| 2.3 T-DNA插入纯合突变植株的农艺性状的调查 | 第47-48页 |
| 3 结果与分析 | 第48-51页 |
| 3.1 T-DNA插入纯合突变体植株的表型观察 | 第48-49页 |
| 3.2 T-DNA插入突变体农艺性状的调查分析 | 第49-51页 |
| 4 讨论 | 第51-52页 |
| 第五章 水稻map65-1的细胞学分析和Tail-PCR分析 | 第52-61页 |
| 1 引言 | 第52页 |
| 2 材料与方法 | 第52-57页 |
| 2.1 材料培养 | 第52-53页 |
| 2.2 细胞死亡鉴定的处理方法 | 第53-54页 |
| 2.2.1 NBT染色 | 第53页 |
| 2.2.2 DAB染色 | 第53-54页 |
| 2.3 白叶枯病菌点的接菌试验 | 第54-55页 |
| 2.3.1 白叶枯病菌的培养 | 第54页 |
| 2.3.2 水稻接菌试验 | 第54-55页 |
| 2.4 Tail-PCR检测OsMAP65-1基因T-DNA插入突变植株 | 第55-57页 |
| 3 结果与分析 | 第57-60页 |
| 3.1 T-DNA插入突变植株细胞死亡的鉴定 | 第57-58页 |
| 3.2 接菌结果分析 | 第58-59页 |
| 3.3 OsMAP65-1基因T-DNA插入突变植株的Tail-PCR分析 | 第59-60页 |
| 4 讨论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第73-75页 |
