| 缩略词 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-19页 |
| 1.1 紫锥菊研究进展 | 第12-17页 |
| 1.1.1 化学活性成分 | 第12页 |
| 1.1.2 生物活性 | 第12-15页 |
| 1.1.3 副作用及毒理研究 | 第15-16页 |
| 1.1.4 应用前景 | 第16-17页 |
| 1.2 内毒素 | 第17-19页 |
| 第二章 紫锥菊多糖对LPS损伤后IEC-6细胞的增殖作用 | 第19-27页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.2 仪器 | 第20页 |
| 2.1.3 溶液配制 | 第20页 |
| 2.2 方法 | 第20-22页 |
| 2.2.1 细胞的培养 | 第20-21页 |
| 2.2.2 细胞分组 | 第21页 |
| 2.2.3 EPS对正常IEC-6细胞增殖作用影响 | 第21-22页 |
| 2.2.4 EPS对LPS作用下IEC-6细胞增殖的影响 | 第22页 |
| 2.2.5 EPS预处理对LPS作用下IEC-6细胞增殖作用的影响 | 第22页 |
| 2.2.6 统计学分析 | 第22页 |
| 2.3 结果 | 第22-26页 |
| 2.3.1 正常及LPS损伤后小肠上皮细胞形态观察 | 第22-23页 |
| 2.3.2 EPS对正常培养的IEC-6细胞增殖作用的影响 | 第23-24页 |
| 2.3.3 EPS对LPS损伤后IEC-6细胞增殖作用的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.4 EPS预处理对LPS损伤的IEC-6细胞增殖作用的影响 | 第25-26页 |
| 2.4 讨论 | 第26-27页 |
| 第三章 紫锥菊多糖对LPS损伤后IEC-6分泌细胞因子的影响 | 第27-41页 |
| 3.1 材料和试剂 | 第27-29页 |
| 3.1.1 材料和试剂 | 第27页 |
| 3.1.2 仪器 | 第27-28页 |
| 3.1.3 溶液配制 | 第28-29页 |
| 3.2 方法 | 第29-34页 |
| 3.2.1 细胞的培养 | 第29页 |
| 3.2.2 细胞分组 | 第29页 |
| 3.2.3 细胞收集 | 第29-30页 |
| 3.2.4 Trizol法提取肺组织RNA | 第30页 |
| 3.2.5 琼脂糖凝胶电泳检测提取的RNA | 第30-31页 |
| 3.2.6 RNA浓度及纯度的检测 | 第31页 |
| 3.2.7 总RNA反转录成cDNA | 第31-32页 |
| 3.2.8 引物序列 | 第32-33页 |
| 3.2.9 目的基因扩增 | 第33页 |
| 3.2.10 扩增产物琼脂凝胶电泳 | 第33页 |
| 3.2.11 统计学分析 | 第33-34页 |
| 3.3 结果 | 第34-39页 |
| 3.3.1 紫锥菊多糖对LPS刺激IEC-6细胞分泌TNF-α mRNA的影响 | 第34-35页 |
| 3.3.2 EPS对LPS刺激IEC-6分泌的IL-1α mRNA的影响 | 第35-36页 |
| 3.3.3 EPS对LPS刺激IEC-6分泌的IL-6 mRNA的影响 | 第36-38页 |
| 3.3.4 EPS对LPS刺激IEC-6分泌的IL-8 mRNA的影响 | 第38-39页 |
| 3.4 讨论 | 第39-41页 |
| 第四章 紫锥菊多糖对LPS损伤后IEC-6分泌蛋白的影响 | 第41-50页 |
| 4.1 材料和试剂 | 第41-42页 |
| 4.1.1 材料和试剂 | 第41页 |
| 4.1.2 仪器 | 第41-42页 |
| 4.1.3 溶液配制 | 第42页 |
| 4.2 方法 | 第42-45页 |
| 4.2.1 细胞培养、分组 | 第42页 |
| 4.2.2 细胞处理 | 第42-43页 |
| 4.2.3 细胞核蛋白提取 | 第43页 |
| 4.2.4 SDS-PAGE | 第43页 |
| 4.2.5 凝胶的考马斯亮蓝染色 | 第43-44页 |
| 4.2.6 Western blot | 第44-45页 |
| 4.2.7 统计学分析 | 第45页 |
| 4.3 结果 | 第45-48页 |
| 4.3.1 EPS对LPS刺激IEC-6分泌的NF-κB p65蛋白的影响 | 第45-46页 |
| 4.3.2 EPS对LPS刺激IEC-6表达的pIκB-α的影响 | 第46-48页 |
| 4.4 讨论 | 第48-50页 |
| 第五章 紫锥菊多糖对内毒素损伤小鼠炎症保护作用 | 第50-60页 |
| 5.1 材料与方法 | 第50-52页 |
| 5.1.1 实验材料及试剂 | 第50页 |
| 5.1.2 分组及造模 | 第50-51页 |
| 5.1.3 组织石蜡切片 | 第51页 |
| 5.1.4 血清细胞因子检测 | 第51页 |
| 5.1.5 湿干重(W/D)比率的检测 | 第51页 |
| 5.1.6 统计学处理 | 第51-52页 |
| 5.2 结果 | 第52-58页 |
| 5.2.1 组织石蜡切片结果 | 第52-55页 |
| 5.2.2 血清中TNF-α、IL-1β、IL-6细胞因子的检测结果 | 第55-57页 |
| 5.2.3 肺脏组织W/D比值的测定结果 | 第57-58页 |
| 5.3 讨论 | 第58-60页 |
| 第六章 紫锥菊多糖对内毒素损伤小鼠作用的分子机制 | 第60-67页 |
| 6.1 材料与试剂 | 第60-61页 |
| 6.1.1 实验仪器 | 第60-61页 |
| 6.1.2 主要试剂 | 第61页 |
| 6.1.3 主要缓冲液与相关试剂的配制 | 第61页 |
| 6.2 方法 | 第61-65页 |
| 6.2.1 动物分组及造模 | 第61-65页 |
| 6.4 讨论 | 第65-67页 |
| 结论 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-73页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
