| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第19-31页 |
| 1.1 研究背景 | 第19页 |
| 1.2 国内外研究现状及研究趋势 | 第19-28页 |
| 1.2.1 植物光抑制 | 第19-20页 |
| 1.2.2 光抑制的保护机制 | 第20-22页 |
| 1.2.3 叶黄素循环 | 第22-26页 |
| 1.2.4 PsbS蛋白和光保护 | 第26页 |
| 1.2.5 竹子的光合研究进展 | 第26-28页 |
| 1.3 研究目标及主要研究内容 | 第28-30页 |
| 1.3.1 拟解决的科学问题和研究目标 | 第28页 |
| 1.3.2 主要研究内容 | 第28-30页 |
| 1.4 技术路线 | 第30-31页 |
| 第二章 强光下毛竹叶片的光抑制及光破坏防御机制 | 第31-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-32页 |
| 2.2.1 毛竹叶片F_v/F_m日变化测定 | 第31页 |
| 2.2.2 强光处理毛竹叶片 | 第31页 |
| 2.2.3 叶黄素循环抑制剂DTT处理毛竹叶片 | 第31-32页 |
| 2.2.4 叶绿素荧光参数测定 | 第32页 |
| 2.3 结果和分析 | 第32-37页 |
| 2.3.1 毛竹叶片F_v/F_m的日变化 | 第32-33页 |
| 2.3.2 强光下毛竹的光抑制特征 | 第33-34页 |
| 2.3.3 DTT处理对毛竹NPQ和F_v/F_m的影响 | 第34-35页 |
| 2.3.4 DTT处理对毛竹叶片吸收光能分配的影响 | 第35-36页 |
| 2.3.5 DTT处理对强光下毛竹叶片Y(Ⅱ)和q P的影响 | 第36-37页 |
| 2.4 小结 | 第37-39页 |
| 第三章 强光胁迫下毛竹转录组测序及分析 | 第39-48页 |
| 3.1 实验材料 | 第39页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第39页 |
| 3.1.2 主要试剂及仪器 | 第39页 |
| 3.1.3 PCR引物 | 第39页 |
| 3.2 实验方法 | 第39-42页 |
| 3.2.1 强光胁迫下毛竹叶绿素荧光参数测定 | 第39-40页 |
| 3.2.2 毛竹叶片总RNA的提取及检测 | 第40-41页 |
| 3.2.3 cDNA文库构建与测序 | 第41页 |
| 3.2.4 数据组装、注释和功能分类等分析 | 第41页 |
| 3.2.5 实时荧光定量PCR验证 | 第41-42页 |
| 3.3 结果和分析 | 第42-47页 |
| 3.3.1 强光胁迫对毛竹叶绿素荧光参数F_v/F_m和NPQ的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.2 转录组测序结果 | 第43页 |
| 3.3.3 差异表达基因分析 | 第43-45页 |
| 3.3.4 差异基因功能分析 | 第45页 |
| 3.3.5 光保护候选基因的筛选 | 第45-47页 |
| 3.4 小结 | 第47-48页 |
| 第四章 毛竹玉米黄质环氧化酶基因克隆和研究 | 第48-77页 |
| 4.1 实验材料 | 第48-49页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第48页 |
| 4.1.2 菌株及载体 | 第48页 |
| 4.1.3 酶、生化试剂及仪器 | 第48-49页 |
| 4.1.4 PCR引物 | 第49页 |
| 4.2 实验方法 | 第49-58页 |
| 4.2.1 毛竹基因组DNA的提取及检测 | 第49页 |
| 4.2.2 总RNA的提取及检测 | 第49页 |
| 4.2.3 cDNA第一条链的合成 | 第49页 |
| 4.2.4 PeZEP基因全长克隆 | 第49-52页 |
| 4.2.5 PeZEP基因的时空表达 | 第52-53页 |
| 4.2.6 PeZEP体外活性鉴定 | 第53-55页 |
| 4.2.7 PeZEP在拟南芥中的表达 | 第55-57页 |
| 4.2.8 PeZEP转基因拟南芥分子鉴定 | 第57页 |
| 4.2.9 PeZEP转基因拟南芥生理参数测定 | 第57-58页 |
| 4.3 结果和分析 | 第58-75页 |
| 4.3.1 毛竹叶片DNA和总RNA的分析 | 第58-59页 |
| 4.3.2 PeZEP基因全长的获得 | 第59-60页 |
| 4.3.3 PeZEP基因序列特征 | 第60页 |
| 4.3.4 PeZEP基因编码蛋白的理化特性与结构分析 | 第60-62页 |
| 4.3.5 PeZEP蛋白的系统进化分析 | 第62-64页 |
| 4.3.6 PeZEP基因的表达分析 | 第64-67页 |
| 4.3.7 PeZEP的原核表达 | 第67-69页 |
| 4.3.8 PeZEP植物表达载体构建 | 第69-70页 |
| 4.3.9 PeZEP转基因植株的鉴定 | 第70-71页 |
| 4.3.10 过量表达PeZEP对拟南芥叶绿素荧光参数的影响 | 第71-74页 |
| 4.3.11 过量表达PeZEP的拟南芥对干旱胁迫的响应 | 第74-75页 |
| 4.4 小结 | 第75-77页 |
| 第五章 毛竹紫黄质脱环氧化酶基因功能研究 | 第77-89页 |
| 5.1 实验材料 | 第77-78页 |
| 5.1.1 植物材料 | 第77页 |
| 5.1.2 菌株及载体 | 第77页 |
| 5.1.3 酶、生化试剂及仪器 | 第77页 |
| 5.1.4 PCR引物 | 第77-78页 |
| 5.2 实验方法 | 第78-79页 |
| 5.2.1 PeVDE表达分析 | 第78页 |
| 5.2.2 PeVDE植物表达载体构建及农杆菌介导转化侵染拟南芥 | 第78-79页 |
| 5.2.3 转基因拟南芥的鉴定 | 第79页 |
| 5.2.4 转基因拟南芥叶绿素荧光成像分析 | 第79页 |
| 5.2.5 转基因拟南芥叶绿素荧光参数测定 | 第79页 |
| 5.3 结果和分析 | 第79-87页 |
| 5.3.1 PeVDE表达分析 | 第79-81页 |
| 5.3.2 PeVDE植物表达载体构建 | 第81-82页 |
| 5.3.3 PeVDE恢复拟南芥npq1突变体的NPQ | 第82-85页 |
| 5.3.4 过量表达PeVDE对拟南芥叶绿素荧光参数的影响 | 第85-87页 |
| 5.4 小结 | 第87-89页 |
| 第六章 毛竹PsbS基因克隆和功能研究 | 第89-110页 |
| 6.1 实验材料 | 第89页 |
| 6.1.1 植物材料 | 第89页 |
| 6.1.2 菌株及载体 | 第89页 |
| 6.1.3 酶、生化试剂及仪器 | 第89页 |
| 6.1.4 PCR引物 | 第89页 |
| 6.2 实验方法 | 第89-94页 |
| 6.2.1 PePsbS和PePsbS1生物信息学分析 | 第89-90页 |
| 6.2.2 PePsbS和PePsbS1表达分析 | 第90-91页 |
| 6.2.3 PePsbS和PePsbS1植物表达载体构建及转化拟南芥 | 第91页 |
| 6.2.4 转基因拟南芥植株的荧光成像分析及荧光参数测定 | 第91-92页 |
| 6.2.5 拟南芥叶片NBT和DAB染色及氧化胁迫处理 | 第92页 |
| 6.2.6 PePsbS和PePsbS1上游启动子扩增及分析 | 第92-93页 |
| 6.2.7 PePsbS和PePsbS1启动子作用分析 | 第93-94页 |
| 6.3 结果和分析 | 第94-109页 |
| 6.3.1 PePsbS和PePsbS1 cDNA序列分析 | 第94-96页 |
| 6.3.2 PePsbS和PePsbS1表达分析 | 第96-98页 |
| 6.3.3 PePsbS和PePsbS1转基因拟南芥的获取及功能分析 | 第98-103页 |
| 6.3.4 PePsbS和PePsbS1启动子的克隆及序列分析 | 第103-106页 |
| 6.3.5 PePsbS和PePsbS1启动子活性分析 | 第106-109页 |
| 6.4 小结 | 第109-110页 |
| 第七章 结论与讨论 | 第110-121页 |
| 7.1 结论 | 第110-111页 |
| 7.2 讨论 | 第111-119页 |
| 7.2.1 毛竹光抑制特征 | 第111页 |
| 7.2.2 叶黄素循环在毛竹光保护中的作用 | 第111-112页 |
| 7.2.3 转录组测序挖掘毛竹光保护基因 | 第112页 |
| 7.2.4 PeZEP在毛竹光保护中的作用 | 第112-116页 |
| 7.2.5 PeVDE在毛竹光保护中的作用 | 第116-117页 |
| 7.2.6 毛竹光保护蛋白PsbS在光保护中的作用 | 第117-119页 |
| 7.3 展望 | 第119-121页 |
| 参考文献 | 第121-131页 |
| 在读期间的学术研究 | 第131-133页 |
| 致谢 | 第133页 |
