| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-26页 |
| 1.1 磺酰脲类除草剂的发展状况 | 第12-13页 |
| 1.2 磺酰脲类除草剂的分子结构及其作用机理 | 第13-14页 |
| 1.3 磺酰脲除草剂的环境问题 | 第14页 |
| 1.4 磺酰脲除草剂的降解机制 | 第14-21页 |
| 1.4.1 磺酰脲除草剂的光解 | 第15页 |
| 1.4.2 磺酰脲除草剂的化学水解 | 第15-16页 |
| 1.4.3 磺酰脲除草剂的微生物降解 | 第16-17页 |
| 1.4.4 有机物的共代谢降解 | 第17-19页 |
| 1.4.5 微生物降解的影响因素 | 第19-21页 |
| 1.5 醚苯磺隆的简介 | 第21-22页 |
| 1.5.1 醚苯磺隆的结构及其物理化学特性 | 第21页 |
| 1.5.2 毒性 | 第21-22页 |
| 1.5.3 国内外研究进展 | 第22页 |
| 1.6 本课题的研究意义以及研究内容 | 第22-26页 |
| 1.6.1 研究意义 | 第22-24页 |
| 1.6.2 研究内容及技术路线 | 第24-26页 |
| 第二章 醚苯磺隆降解菌的分离、筛选与纯化 | 第26-32页 |
| 2.1 材料与检测方法 | 第26-27页 |
| 2.1.1 培养基与试剂 | 第26-27页 |
| 2.1.2 醚苯磺隆含量的测定 | 第27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-28页 |
| 2.2.1 降解菌株的富集、分离与纯化 | 第27页 |
| 2.2.2 降解菌株的培养特征及生理生化鉴定 | 第27-28页 |
| 2.2.3 降解菌株16S rDNA基因序列测定与分析 | 第28页 |
| 2.2.4 降解菌株系统发育定位 | 第28页 |
| 2.3 结果与分析 | 第28-31页 |
| 2.3.1 降解菌株的分离筛选及其效果验证 | 第28-29页 |
| 2.3.2 菌株MB-1的菌落形态、生理生化特征 | 第29-30页 |
| 2.3.3 基于16S rDNA基因序列的系统发育分析 | 第30-31页 |
| 2.4 讨论 | 第31页 |
| 2.5 本章小结 | 第31-32页 |
| 第三章 醚苯磺隆降解菌MB-1的生长特性研究 | 第32-40页 |
| 3.1 材料与检测方法 | 第32页 |
| 3.1.1 培养基与试剂 | 第32页 |
| 3.1.2 菌种制备及菌体生长量的测定方法 | 第32页 |
| 3.2 实验方法 | 第32-34页 |
| 3.2.1 菌株生长曲线的测定 | 第32-33页 |
| 3.2.2 初始pH值对菌株MB-1生长的影响 | 第33页 |
| 3.2.3 温度对菌株MB-1生长的影响 | 第33页 |
| 3.2.4 通气量对菌株MB-1生长的影响 | 第33页 |
| 3.2.5 NaCl浓度对菌株MB-1生长的影响 | 第33页 |
| 3.2.6 菌株MB-1对抗生素的耐受性 | 第33-34页 |
| 3.3 结果与分析 | 第34-38页 |
| 3.3.1 MB-1在LB培养基中的生长曲线 | 第34页 |
| 3.3.2 pH值对菌株MB-1生长的影响 | 第34-35页 |
| 3.3.3 温度对菌株MB-1生长的影响 | 第35-36页 |
| 3.3.4 装液量对菌株MB-1生长的影响 | 第36页 |
| 3.3.5 NaCl浓度对菌株MB-1生长的影响 | 第36-37页 |
| 3.3.6 菌株MB-1对抗生素的耐受性 | 第37-38页 |
| 3.4 讨论 | 第38页 |
| 3.5 本章小结 | 第38-40页 |
| 第四章 醚苯磺隆共代谢降解菌MB-1的共代谢条件的优化 | 第40-62页 |
| 4.1 材料与测定方法 | 第40-41页 |
| 4.1.1 培养基与试剂 | 第40-41页 |
| 4.1.2 菌种制备以及菌体生长量的测定方法 | 第41页 |
| 4.1.3 醚苯磺隆含量检测方法 | 第41页 |
| 4.2 实验方法 | 第41-44页 |
| 4.2.1 碳饥饿实验 | 第41页 |
| 4.2.2 共代谢基质的选择 | 第41页 |
| 4.2.3 菌株MB-1对醚苯磺隆的吸附效果检验 | 第41-42页 |
| 4.2.4 葡萄糖浓度的优化实验 | 第42页 |
| 4.2.5 醚苯磺隆初始浓度的优化实验 | 第42页 |
| 4.2.6 接菌量的优化实验 | 第42-43页 |
| 4.2.7 硫酸铵浓度的优化实验 | 第43页 |
| 4.2.8 氯化钠浓度的优化实验 | 第43页 |
| 4.2.9 初始pH的优化实验 | 第43页 |
| 4.2.10 温度的优化实验 | 第43-44页 |
| 4.2.11 菌株MB-1在优化条件下利用醚苯磺隆的生长降解曲线 | 第44页 |
| 4.2.12 金属离子对菌MB-1降解醜苯横隆的影响 | 第44页 |
| 4.2.13 浅探醚苯磺隆的降解途径 | 第44页 |
| 4.3 结果与分析 | 第44-58页 |
| 4.3.1 碳饥饿实验的结果 | 第44-45页 |
| 4.3.2 共代谢基质的选择结果 | 第45-46页 |
| 4.3.3 菌株MB-1对醚苯磺隆的吸附效果检验的结果 | 第46-47页 |
| 4.3.4 葡萄糖浓度的选择 | 第47-48页 |
| 4.3.5 醚苯磺隆初始浓度的选择 | 第48-49页 |
| 4.3.6 接菌量的选择 | 第49-50页 |
| 4.3.7 硫酸铵浓度的选择 | 第50-51页 |
| 4.3.8 氯化钠浓度的选择 | 第51-52页 |
| 4.3.9 初始pH的优化实验结果 | 第52页 |
| 4.3.10 温度的优化实验结果 | 第52-53页 |
| 4.3.11 菌株MB-1在优化条件下利用醚苯磺隆的生长降解曲线 | 第53-54页 |
| 4.3.12 金属离子对菌MB-1降解醚苯磺隆的影响 | 第54-55页 |
| 4.3.13 醚苯磺隆的降解途径 | 第55-58页 |
| 4.4 讨论 | 第58-60页 |
| 4.5 本章小结 | 第60-62页 |
| 第五章 MB-1降解菌的细胞固定化研究 | 第62-74页 |
| 5.1 材料与测定方法 | 第63-64页 |
| 5.1.1 供试菌株 | 第63页 |
| 5.1.2 培养基与试剂 | 第63-64页 |
| 5.1.3 醚苯磺隆的测定 | 第64页 |
| 5.1.4 种子液的制备 | 第64页 |
| 5.1.5 MB-1固定化小球对醚苯磺隆的降解 | 第64页 |
| 5.2 以海藻酸钠为载体的包埋固定化 | 第64-67页 |
| 5.2.1 以海藻酸钠为载体的固定化小球的制备 | 第64-65页 |
| 5.2.2 海藻酸钠包埋条件的确定 | 第65-66页 |
| 5.2.3 以海藻酸钠为载体的包埋固定化结果与分析 | 第66-67页 |
| 5.3 以聚乙烯醇(PVA)为载体的包埋固定化 | 第67-70页 |
| 5.3.1 以聚乙烯醇(PVA)为载体的固定化小球的制备 | 第67-68页 |
| 5.3.2 聚乙烯醇(PVA)包埋条件的确定 | 第68-70页 |
| 5.4 两种固定化小球的稳定性研究 | 第70-71页 |
| 5.4.1 两种固定化小球的稳定性实验方法 | 第70-71页 |
| 5.4.2 两种固定化小球的稳定性结果 | 第71页 |
| 5.5 讨论 | 第71-72页 |
| 5.6 本章结论 | 第72-74页 |
| 第六章 全文总结与展望 | 第74-76页 |
| 6.1 全文总结 | 第74页 |
| 6.2 创新点与不足 | 第74-76页 |
| 6.2.1 创新点 | 第74页 |
| 6.2.2 不足之处 | 第74-75页 |
| 6.2.3 研究展望 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-84页 |
| 致谢 | 第84-86页 |
| 研究中获得的相关DNA序列 | 第86-87页 |
