| 摘要 | 第12-15页 |
| Abstract | 第15-17页 |
| 缩略词 | 第18-20页 |
| 第一章 文献综述 | 第20-34页 |
| 1.1 低温胁迫对植物的影响 | 第20-23页 |
| 1.1.1 低温胁迫对生长发育的影响 | 第20-21页 |
| 1.1.2 低温胁迫对细胞膜的影响 | 第21页 |
| 1.1.3 低温胁迫对光合作用的影响 | 第21页 |
| 1.1.4 低温胁迫对渗透调节物质的影响 | 第21-22页 |
| 1.1.5 低温胁迫对抗氧化系统的影响 | 第22页 |
| 1.1.6 低温胁迫对内源激素的影响 | 第22-23页 |
| 1.2 植物中的多胺及在抗逆性中的作用 | 第23-32页 |
| 1.2.1 多胺的种类及形态 | 第23页 |
| 1.2.2 植物体中多胺的合成代谢途径 | 第23-25页 |
| 1.2.3 多胺在植物体内主要的生理功能 | 第25-26页 |
| 1.2.4 多胺在植物逆境胁迫中的作用机理 | 第26-29页 |
| 1.2.5 多胺与低温胁迫的关系 | 第29-32页 |
| 1.3 本研究的目的与意义 | 第32-33页 |
| 1.4 本研究的技术路线 | 第33-34页 |
| 第二章 外源亚精胺对番茄幼苗内源多胺代谢及耐低温性的影响 | 第34-48页 |
| 2.1 材料与方法 | 第34页 |
| 2.1.1 试材与试验设计 | 第34页 |
| 2.2 测定内容与方法 | 第34-37页 |
| 2.2.1 干鲜重的测定 | 第34-35页 |
| 2.2.2 PSⅡ光化学效率的测定 | 第35页 |
| 2.2.3 多胺含量的测定 | 第35页 |
| 2.2.4 多胺合成酶和分解酶活性的测定 | 第35页 |
| 2.2.5 可溶性糖和脯氨酸含量的测定 | 第35页 |
| 2.2.6 MDA、O_2~-产生速率和H_2O_2含量的测定 | 第35页 |
| 2.2.7 抗氧化酶的提取与活性测定 | 第35-36页 |
| 2.2.8 抗坏血酸-谷胱甘肽(AsA-GSH)循环组成物质的测定 | 第36页 |
| 2.2.9 抗坏血酸-谷胱甘肽(AsA-GSH)相关酶活性的测定 | 第36页 |
| 2.2.10 抗氧化酶基因表达的测定 | 第36-37页 |
| 2.3 数据分析 | 第37页 |
| 2.4 结果与分析 | 第37-44页 |
| 2.4.1 外源Spd对番茄幼苗生长,干鲜重和Fv/Fm的影响 | 第37-38页 |
| 2.4.2 外源Spd对游离态和结合态多胺含量的影响 | 第38-39页 |
| 2.4.3 外源Spd对多胺合成酶和分解酶活性的影响 | 第39-40页 |
| 2.4.4 外源Spd对渗透调节物质的影响 | 第40-41页 |
| 2.4.5 外源Spd对O_2~-、H_2O_2和MDA含量的影响 | 第41页 |
| 2.4.6 外源Spd对抗氧化酶活性的影响 | 第41-42页 |
| 2.4.7 外源Spd对AsA-GSH循环相关酶活性及基因表达的影响 | 第42-43页 |
| 2.4.8 外源Spd对番茄叶片AsA-GSH循环组分的影响 | 第43-44页 |
| 2.5 讨论 | 第44-48页 |
| 2.5.1 外源Spd对于低温胁迫下番茄幼苗生长指标的影响 | 第44-45页 |
| 2.5.2 外源Spd对低温胁迫下番茄幼苗内源多胺代谢的影响 | 第45页 |
| 2.5.3 外源Spd对低温胁迫下番茄幼苗耐低温性的影响 | 第45-48页 |
| 第三章 亚精胺诱导的NO在番茄幼苗耐低温性中的作用 | 第48-60页 |
| 3.1 试验材料与试验设计 | 第48-49页 |
| 3.2 测定内容与方法 | 第49-50页 |
| 3.2.1 NO含量的测定及荧光检测 | 第49页 |
| 3.2.2 H_2O_2含量的测定及组织化学染色 | 第49页 |
| 3.2.3 PSⅡ光化学效率的测定 | 第49-50页 |
| 3.2.4 电解质渗透率的测定 | 第50页 |
| 3.2.5 抗氧化酶活性的测定 | 第50页 |
| 3.2.6 抗氧化酶相关基因表达的测定 | 第50页 |
| 3.3 结果与分析 | 第50-58页 |
| 3.3.1 外源Spd和抑制剂对番茄幼苗叶片NO含量的影响 | 第50-51页 |
| 3.3.2 NO清除剂和抑制剂对Spd诱导的NO含量的影响 | 第51-52页 |
| 3.3.3 DPI和DMTU对Spd诱导的H_2O_2的影响 | 第52-53页 |
| 3.3.4 DPI和DMTU对Spd诱导的NO含量的影响 | 第53-54页 |
| 3.3.5 NO清除剂和抑制剂对Spd诱导的H_2O_2含量的影响 | 第54-55页 |
| 3.3.6 NO抑制剂和清除剂对Fv/Fm的影响 | 第55页 |
| 3.3.7 NO抑制剂和清除剂对电解质渗透率的影响 | 第55-56页 |
| 3.3.8 NO抑制剂和清除剂对Spd诱导的抗氧化酶活性及其因表达的影响 | 第56-58页 |
| 3.4 讨论 | 第58-60页 |
| 3.4.1 Spd对于低温胁迫下番茄叶片NO的影响 | 第58页 |
| 3.4.2 Spd诱导低温胁迫下番茄叶片中NO的合成途径 | 第58-59页 |
| 3.4.3 低温胁迫下番茄叶片中Spd诱导的NO和H_2O_2相互关系 | 第59页 |
| 3.4.4 低温胁迫下Spd诱导的NO对番茄叶片耐低温性中的影响 | 第59-60页 |
| 第四章 多胺与ABA在番茄响应低温胁迫中的相互作用机制 | 第60-68页 |
| 4.1 材料与方法 | 第60-61页 |
| 4.1.1 试材与试验设计 | 第60-61页 |
| 4.2 测定内容与方法 | 第61-62页 |
| 4.2.1 ABA含量的测定 | 第61页 |
| 4.2.2 游离态多胺含量的测定 | 第61页 |
| 4.2.3 电解质渗透率的测定 | 第61-62页 |
| 4.3 结果与分析 | 第62-66页 |
| 4.3.1 外源Put和D-Arg对ABA含量及NCED1相对表达量的影响 | 第62页 |
| 4.3.2 外源ABA和D-Arg对电解质渗透率的影响 | 第62-63页 |
| 4.3.3 低温胁迫对于突变体和野生型番茄幼苗叶片中内源PAs含量的影响 | 第63-64页 |
| 4.3.4 外源ABA对突变体和野生型番茄幼苗叶片中ABA和Put含量的影响 | 第64页 |
| 4.3.5 外源Put对突变体和野生型番茄叶片中内源Put和ABA含量的影响 | 第64-65页 |
| 4.3.6 外源Put和ABA对突变体和野生型番茄叶片中电解质渗透率的影响 | 第65-66页 |
| 4.4 讨论 | 第66-68页 |
| 4.4.1 低温胁迫下外源Put诱导的ABA对番茄幼苗耐低温性的影响 | 第66页 |
| 4.4.2 低温胁迫对ABA缺失突变体及野生型番茄叶片中内源PAs含量的影响 | 第66页 |
| 4.4.3 低温胁迫下突变体及野生型番茄幼苗叶片中Put与ABA之间的关系 | 第66-68页 |
| 第五章 亚精胺诱导的抗氧化防御中MAPK与信号物质的关系 | 第68-77页 |
| 5.1 材料与方法 | 第68-69页 |
| 5.1.1 试材与试验设计 | 第68-69页 |
| 5.2 测定内容与方法 | 第69-70页 |
| 5.2.1 PSⅡ光化学效率的测定 | 第69页 |
| 5.2.2 抗氧化酶的提取与活性测定 | 第69页 |
| 5.2.3 H_2O_2和NO含量的测定 | 第69页 |
| 5.2.4 基因表达的测定 | 第69-70页 |
| 5.3 结果与分析 | 第70-76页 |
| 5.3.1 外源Spd对MAPK相关基因相对表达量的影响 | 第70-71页 |
| 5.3.2 MAPK抑制剂对Spd诱导的Fv/Fm的影响 | 第71页 |
| 5.3.3 MAPK抑制剂对Spd诱导的抗氧化酶及其相关基因表达的影响 | 第71-72页 |
| 5.3.4 MAPK抑制剂对H_2O_2诱导的抗氧化酶及其相关基因表达的影响 | 第72-73页 |
| 5.3.5 MAPK抑制剂对NO诱导的抗氧化酶及其相关基因表达的影响 | 第73-74页 |
| 5.3.6 MAPK抑制剂对Spd诱导的H_2O_2含量的影响 | 第74-75页 |
| 5.3.7 MAPK抑制剂对Spd诱导的NO含量的影响 | 第75-76页 |
| 5.4 讨论 | 第76-77页 |
| 5.4.1 MAPK参与到Spd诱导番茄幼苗抗氧化防御反应中 | 第76页 |
| 5.4.2 诱导番茄幼苗抗氧化防御反应中NO,MAPK与H_2O_2与之间的关系 | 第76-77页 |
| 全文总结与展望 | 第77-80页 |
| 本论文的特色与创新之处 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-97页 |
| 致谢 | 第97-98页 |
| 攻读学位期间发表文章 | 第98-99页 |
