| 摘要 | 第4-6页 |
| 英文摘要 | 第6-7页 |
| 综述部分 | 第10-24页 |
| 第一章 兔出血症病毒及其检测技术 | 第10-24页 |
| 1.1 兔瘟病毒(RHDV) | 第10-17页 |
| 1.1.1 结构特征 | 第11-14页 |
| 1.1.1.1 病毒形态结构 | 第11页 |
| 1.1.1.2 基因组结构特征与病毒蛋白 | 第11-14页 |
| 1.1.2 理化特征与培养特性 | 第14页 |
| 1.1.3 分类地位与分型 | 第14-16页 |
| 1.1.3.1 分类地位 | 第14-15页 |
| 1.1.3.2 毒株分型 | 第15-16页 |
| 1.1.4 病毒的起源 | 第16-17页 |
| 1.2 RHDV检测诊断技术 | 第17-22页 |
| 1.2.1 初诊 | 第17-18页 |
| 1.2.2 实验室检测诊断技术 | 第18-22页 |
| 1.2.2.1 电镜技术 | 第18页 |
| 1.2.2.2 血凝-血凝抑制试验(HA-HIA) | 第18-19页 |
| 1.2.2.3 酶联免疫吸附试验(ELISA) | 第19-20页 |
| 1.2.2.4 分子生物学技术 | 第20-22页 |
| 1.3 本研究的目的意义 | 第22-24页 |
| 试验研究 | 第24-42页 |
| 第二章 兔出血症病毒2型VP60基因保守区人工合成及RT-PCR检测方法初探 | 第24-34页 |
| 2.1 材料与方法 | 第24-29页 |
| 2.1.1 试剂与样品 | 第24-25页 |
| 2.1.2 引物设计 | 第25-26页 |
| 2.1.3 RHDV2 VP60基因靶片段的人工合成 | 第26-28页 |
| 2.1.3.1 搭桥PCR | 第26-27页 |
| 2.1.3.2 目的基因重组质粒的构建 | 第27-28页 |
| 2.1.4 RHDV VP60基因靶片段的克隆鉴定 | 第28页 |
| 2.1.5 反应条件的优化 | 第28页 |
| 2.1.6 RHDV2 RT-PCR敏感性试验 | 第28页 |
| 2.1.7 RHDV2 RT-PCR特异性试验 | 第28页 |
| 2.1.8 初步应用试验 | 第28-29页 |
| 2.2 结果 | 第29-32页 |
| 2.2.1 RHDV2和RHDV靶基因片段的克隆鉴定 | 第29-31页 |
| 2.2.2 反应条件的优化 | 第31页 |
| 2.2.3 RHDV2 RT-PCR的敏感性和特异性 | 第31-32页 |
| 2.2.4 样品检测 | 第32页 |
| 2.3 讨论 | 第32-34页 |
| 第三章 兔出血症病毒与兔出血症病毒2型复合RT-PCR检测方法的初步研究 | 第34-42页 |
| 3.1 材料与方法 | 第34-36页 |
| 3.1.1 试剂与样品 | 第34-35页 |
| 3.1.2 引物设计 | 第35页 |
| 3.1.3 RHDV与RHDV2靶基因片段的克隆鉴定 | 第35-36页 |
| 3.1.3.1 RHDV2 VP60靶基因片段的人工合成 | 第35页 |
| 3.1.3.2 RHDV VP60基因靶片段的扩增 | 第35页 |
| 3.1.3.3 RHDV2与RHDV靶基因片段的克隆鉴定 | 第35-36页 |
| 3.1.4 反应条件的优化 | 第36页 |
| 3.1.5 复合RT-PCR敏感性试验 | 第36页 |
| 3.1.6 复合RT-PCR特异性试验 | 第36页 |
| 3.1.7 初步应用试验 | 第36页 |
| 3.2 结果 | 第36-40页 |
| 3.2.1 RHDV2和RHDV靶基因片段的克隆鉴定 | 第36-38页 |
| 3.2.2 反应条件的确立 | 第38页 |
| 3.2.3 复合RT-PCR的敏感性和特异性 | 第38-40页 |
| 3.2.4 样品检测 | 第40页 |
| 3.3 讨论 | 第40-42页 |
| 结论部分 | 第42-43页 |
| 第四章 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 个人简介 | 第49页 |
