| 符号说明 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 1 前言 | 第10-18页 |
| ·机器视觉技术 | 第10-11页 |
| ·蛋白质电泳 | 第11-13页 |
| ·同工酶电泳 | 第11-12页 |
| ·种子贮藏蛋白电泳 | 第12-13页 |
| ·DNA分子标记 | 第13-17页 |
| ·传统分子标记技术 | 第13-14页 |
| ·SSR分子标记 | 第14-15页 |
| ·SNP标记 | 第15-16页 |
| ·In Del标记 | 第16-17页 |
| ·DNA快速提取技术及多重PCR | 第17页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第17-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-23页 |
| ·试验材料 | 第18页 |
| ·试验设计 | 第18-19页 |
| ·试验方法 | 第19-23页 |
| ·蛋白质电泳检测向日葵种子纯度方法的研究 | 第19-20页 |
| ·向日葵贮藏蛋白中水溶蛋白，盐溶蛋白，剩余蛋白的分步提取 | 第19页 |
| ·蛋白含量分析 | 第19页 |
| ·连续醋酸尿素聚丙烯酰胺凝胶制备 | 第19-20页 |
| ·SSR分子检测向日葵种子纯度方法的研究 | 第20-22页 |
| ·DNA质量的PCR扩增检测 | 第20页 |
| ·高多态性SSR引物的筛选及通用多重PCR的建立 | 第20-21页 |
| ·PAGE检测PCR扩增产物 | 第21-22页 |
| ·田间种植鉴定法检测向日葵品种纯度 | 第22页 |
| ·相关试剂的配制 | 第22-23页 |
| 3 结果与分析 | 第23-40页 |
| ·蛋白质电泳检测向日葵种子纯度方法研究 | 第23-32页 |
| ·向日葵种子贮藏蛋白组成 | 第23页 |
| ·提取液体积比对电泳结果的影响 | 第23-25页 |
| ·提取液中加入的SDS对向日葵种子蛋白电泳的影响 | 第25-26页 |
| ·优化后的AU-PAGE技术的鉴别效果 | 第26-29页 |
| ·蛋白指纹数据库的建立与应用 | 第29页 |
| ·向日葵种子样品的纯度检测 | 第29-32页 |
| ·向日葵种子纯度检测的分子技术研究 | 第32-37页 |
| ·提取液的浓度和体积比对PCR产物的影响 | 第32-33页 |
| ·提取时间对PCR产物的影响 | 第33-35页 |
| ·DNA模板量对PCR产物的影响 | 第35页 |
| ·引物筛选及数据库的建立 | 第35-37页 |
| ·SSR分子检测向日葵种子样品的纯度 | 第37页 |
| ·室内检测结果与田间种植鉴定的相关性分析 | 第37-40页 |
| 4 讨论 | 第40-42页 |
| ·向日葵种子纯度贮藏蛋白电泳快速检测法与已报道的蛋白纯度检测方法的比较 | 第40-41页 |
| ·向日葵种子纯度SSR分子快速检测法与已报道的其它分子检测纯度方法的比较 | 第41-42页 |
| ·向日葵种子纯度室内快速检测方法与田间小区种植检测法的比较 | 第42页 |
| 5 结论 | 第42-44页 |
| ·建立了向日葵种子纯度蛋白电泳快速检测方法 | 第42页 |
| ·建立了基于PCR的向日葵种子DNA快速提取方法 | 第42-43页 |
| ·建立了向日葵种子纯度快速分子检测方法 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-50页 |
| 附录 | 第50-65页 |
| 致谢 | 第65页 |
