| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-12页 |
| 缩略词表 | 第12-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-17页 |
| 第二章 FC-99缓解狼疮性肾炎的发病进程 | 第17-25页 |
| ·引言 | 第17-18页 |
| ·实验材料 | 第18-19页 |
| ·实验对象 | 第18页 |
| ·主要试剂 | 第18页 |
| ·主要仪器设备 | 第18-19页 |
| ·实验方法 | 第19-21页 |
| ·实验动物分组 | 第19页 |
| ·FC-99治疗小鼠狼疮性肾炎 | 第19页 |
| ·小鼠尿蛋白浓度统计 | 第19页 |
| ·ELIAS检测小鼠自身抗体沉积情况 | 第19-20页 |
| ·小鼠血清炎性因子的检测 | 第20页 |
| ·实时定量PCR | 第20-21页 |
| ·数据分析 | 第21页 |
| ·实验结果与分析 | 第21-23页 |
| ·FC-99缓解MRL/lpr小鼠狼疮性肾炎 | 第21-23页 |
| ·讨论 | 第23-25页 |
| 第三章 FC-99可抑制LPS诱导的DCS活化及其BAFF产生 | 第25-44页 |
| ·引言 | 第25页 |
| ·实验材料 | 第25-27页 |
| ·实验对象 | 第25-26页 |
| ·主要实验试剂 | 第26页 |
| ·实验仪器和设备 | 第26-27页 |
| ·实验方法 | 第27-32页 |
| ·流式分析 | 第27页 |
| ·FC-99的配置 | 第27页 |
| ·骨髓细胞的制备和髓样树突状细胞的培养 | 第27-28页 |
| ·CCK-8法检测细胞活力 | 第28-29页 |
| ·流式细胞术检测DCs活化的表面标志 | 第29页 |
| ·Q-PCR检测髓样树突状细胞炎症因子的表达 | 第29-31页 |
| ·ELISA检测DCs培养上清中BAFF的表达 | 第31-32页 |
| ·数据统计分析 | 第32页 |
| ·实验结果 | 第32-41页 |
| ·FC-99减少MRL/lpr小鼠脾脏中B细胞的百分比,活化和成熟 | 第32-35页 |
| ·FC-99抑制MRL/lpr小鼠DCs活化 | 第35-37页 |
| ·FC-99的化学结构及其对DC活力的影响 | 第37-38页 |
| ·FC-99可抑制TLR4信号诱导的DCs活化 | 第38-39页 |
| ·FC-99可以抑制LPS-诱导的DCs分泌BAFF | 第39-40页 |
| ·FC-99通过减少DCs分泌BAFF抑制B细胞活化 | 第40-41页 |
| ·讨论 | 第41-44页 |
| 第四章 FC-99通过抑制IRAK4磷酸化降低LPS诱导的DCS活化及BAFF产生 | 第44-51页 |
| ·引言 | 第44页 |
| ·实验材料 | 第44-45页 |
| ·实验对象 | 第44-45页 |
| ·主要试剂 | 第45页 |
| ·主要仪器设备 | 第45页 |
| ·实验方法 | 第45-47页 |
| ·Western blot | 第45-47页 |
| ·数据分析 | 第47页 |
| ·实验结果 | 第47-49页 |
| ·FC-99可以抑制IRAK4磷酸化水平 | 第48页 |
| ·FC-99对DCs细胞NF-κB通路和MAPK通路的影响 | 第48-49页 |
| ·讨论 | 第49-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-58页 |
| 附录 | 第58-62页 |
| 硕士期间科研成果 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
