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以IspD为靶点的新型抗结核药物筛选研究

缩略语表第1-9页
中文摘要第9-10页
英文摘要第10-12页
前言第12-16页
实验材料与仪器第16-22页
 1 菌株及细胞第16页
 2 基因组和质粒第16页
 3 培养基第16-18页
   ·E.coli培养基第16-17页
   ·分杆杆菌培养基第17页
   ·其他菌株药敏实验所用培养基第17-18页
   ·Vero和HepG2培养基第18页
 4 主要试剂第18页
 5 溶液第18-20页
   ·抗生素溶液第18-19页
   ·蛋白相关溶液第19-20页
 6 试剂盒第20-21页
 7 工具酶第21页
 8 主要仪器第21-22页
实验方法第22-43页
 1 基于MTB的表型筛选第22页
   ·化合库中样品的初筛第22页
   ·化合物样品的拆分及复筛第22页
 2 MtIspD酶抑制剂的筛选第22-35页
   ·ispD基因的扩增第22-24页
   ·表达载体的构建第24-27页
   ·表达菌株的构建第27-28页
   ·MtIspD蛋白的诱导表达第28页
   ·MtIspD蛋白纯化及蛋白质含量测定第28-30页
   ·MtIspD蛋白的定量第30页
   ·MtIspD蛋白的SDS-PAGE电泳检测第30-32页
   ·MtIspD活性测定原理及方法第32页
   ·MtIspD酶活性测定体系优化第32-33页
   ·MtIspD抑制剂筛选模型的确立第33-35页
 3 抑制剂半数抑制浓度(IC_(50))测定第35页
 4 抑制剂的体外抗结核活性测定第35-36页
 5 抑制剂抗菌谱活性测定第36页
 6 化合物IMB-4901对MtIspD的动力学研究第36页
 7 化合物IMB-4901的细胞毒性研究第36-37页
 8 MtIspD可控表达菌株的构建第37-43页
   ·构建MtIspD可控表达菌株的目的及意义第37-38页
   ·MtIspD可控表达质粒构建流程第38页
   ·ispD基因前320bp的获得第38-39页
   ·PCR产物的纯化第39-40页
   ·纯化的PCR产物双酶切处理及回收第40页
   ·pAZI 9479的双酶切处理及片段回收第40-41页
   ·酶切后ispD前320bp与pAZI9479连接第41页
   ·连接产物转化DH5α感受态细胞第41页
   ·阳性克隆鉴定第41页
   ·阳性克隆质粒的提取第41-42页
   ·重组质粒测序第42页
   ·重组质粒pAZI 9479::ispDqian320bp电转入H37Rv第42-43页
实验结果第43-58页
 1 基于MTB(H37Rv)表型筛选抗结核活性化合物第43页
 2 MtIspD酶抑制剂的筛选第43-51页
   ·表达质粒pET28a(+)::ispD的构建与验证第43-45页
   ·MtIspD蛋白的制备第45-47页
   ·酶活力测定第47-48页
   ·酶活测定体系的优化第48-50页
   ·MtIspD抑制剂筛选模型第50页
   ·MtIspD抑制剂的筛选第50-51页
 3 MtIspD抑制剂对H37Rv的最低抑菌浓度(MIC)第51-52页
 4 MtIspD抑制剂的抗菌谱第52-53页
 5 化合物IMB-4901对MtIspD的抑制动力学研究第53-54页
 6 化合物IMB-4901对肝肾细胞毒性研究第54-55页
 7 MtIspD可控表达菌株的构建第55-58页
   ·ispD基因前320bp片段的获得第55页
   ·纯化的PCR产物双酶切第55页
   ·pAZI 9479的双酶切第55-56页
   ·阳性克隆菌落PCR鉴定第56页
   ·重组质粒pAZI 9479::ispDqian320bp测序第56页
   ·重组质粒pAZI 9479::ispDqian320bp电转入H37Rv第56-58页
讨论第58-60页
结论第60-61页
致谢第61-62页
参考文献第62-63页
文献综述第63-76页
 参考文献第70-76页
附录第76-78页

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