| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-8页 |
| 第一章 绪论 | 第8-14页 |
| ·甾体的生物转化 | 第8页 |
| ·黄姜 | 第8页 |
| ·薯蓣皂苷元 | 第8-9页 |
| ·薯蓣皂苷元的提取研究 | 第9-10页 |
| ·薯蓣皂苷元分析方法的研究进展 | 第10-11页 |
| ·生物转化法生产薯蓣皂苷元的研究进展 | 第11页 |
| ·糖苷酶的催化特性研究进展 | 第11-12页 |
| ·本课题研究的意义和内容 | 第12-14页 |
| ·本课题研究的意义 | 第12页 |
| ·本课题的研究内容 | 第12-14页 |
| 第二章 菌种筛选和产物鉴定 | 第14-26页 |
| ·前言 | 第14页 |
| ·实验材料与试剂 | 第14-15页 |
| ·实验方法 | 第15-18页 |
| ·培养基 | 第15页 |
| ·菌种初筛 | 第15页 |
| ·菌种复筛 | 第15页 |
| ·菌种鉴定方法 | 第15-17页 |
| ·高氯酸显色法 | 第17页 |
| ·薄层层析(TLC)法 | 第17页 |
| ·高效液相色谱(HPLC)法 | 第17页 |
| ·红外色谱(IR)法 | 第17页 |
| ·黄姜的预处理方法 | 第17-18页 |
| ·不同黄姜预处理方式对薯蓣皂苷元产量的影响 | 第18页 |
| ·结果与讨论 | 第18-23页 |
| ·菌种筛选 | 第18-21页 |
| ·菌种鉴定 | 第21-22页 |
| ·黄姜的预处理方法 | 第22页 |
| ·黄姜的不同处理方式对薯蓣皂苷元产率的影响 | 第22-23页 |
| ·小结 | 第23-26页 |
| 第三章 G. intermedia WX12转化生成薯蓣皂苷元的工艺优化 | 第26-40页 |
| ·引言 | 第26页 |
| ·实验材料 | 第26页 |
| ·药品及试剂 | 第26页 |
| ·仪器 | 第26-27页 |
| ·实验方法 | 第27-30页 |
| ·培养基 | 第27页 |
| ·转化条件 | 第27页 |
| ·细胞干重的测定 | 第27页 |
| ·培养基单因素优化方法 | 第27-28页 |
| ·培养条件优化 | 第28页 |
| ·Plackett-Burman 实验设计 | 第28-29页 |
| ·最陡爬坡实验设计 | 第29页 |
| ·响应面实验设计 | 第29-30页 |
| ·结果与讨论 | 第30-38页 |
| ·培养基成分单13素优化 | 第30-33页 |
| ·最适转化条件的确定 | 第33-35页 |
| ·PB实验设计结果与分析 | 第35页 |
| ·最陆爬坡实验结果 | 第35-36页 |
| ·响应面实验结果 | 第36-38页 |
| ·本章小结 | 第38-40页 |
| 第四章 薯蓣皂苷糖苷酶全细胞酶学性质研究 | 第40-48页 |
| ·引言 | 第40页 |
| ·实验材料 | 第40页 |
| ·药品及试剂 | 第40页 |
| ·仪器 | 第40-41页 |
| ·实验方法 | 第41-43页 |
| ·培养基 | 第41页 |
| ·糖苷酶酶活检测方法 | 第41页 |
| ·菌丝体悬液的制备 | 第41页 |
| ·转化过程中糖苷酶酶活的时间曲线 | 第41页 |
| ·黄姜皂苷糖苷酶全细胞酶学性质研究 | 第41-42页 |
| ·糖苷酶酶活与薯蓣皂苷元产率之间的关系 | 第42页 |
| ·优化转化条件后薯蓣皂苦元的产率 | 第42-43页 |
| ·实验结果与讨论 | 第43-47页 |
| ·糖苷酶酶活随时间的变化 | 第43页 |
| ·最适温度 | 第43页 |
| ·温度稳定性 | 第43-44页 |
| ·最适 pH | 第44页 |
| ·pH 稳定性 | 第44页 |
| ·金属离子对酶活的影响 | 第44-45页 |
| ·有机溶剂对酶活的影响 | 第45页 |
| ·不同浓度的乙酸乙酯对薯蓣皂苷元产率的影响 | 第45-46页 |
| ·不同种类和浓度的环糊精对糖苷酶酶活和薯蓣皂苷元产率的影响 | 第46页 |
| ·皂苷的补加对薯蓣皂苷元产率的影响 | 第46-47页 |
| ·优化转化条件后薯蓣皂苷元的产率 | 第47页 |
| ·本章小结 | 第47-48页 |
| 结论与展望 | 第48-49页 |
| 主要结论 | 第48页 |
| 展望 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-53页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第53页 |