| 中文摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 英汉缩略词对照表 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-16页 |
| 第一部分 大鼠骨髓间充质干细胞（MSCs）分离培养、鉴定和向平滑肌细胞的体外分化 | 第16-32页 |
| 1 材料和方法 | 第16-23页 |
| ·实验材料和仪器 | 第16-17页 |
| ·实验动物 | 第16页 |
| ·主要实验试剂 | 第16-17页 |
| ·主要实验仪器 | 第17页 |
| ·实验方法 | 第17-23页 |
| ·MSCs 的分离培养、纯化 | 第17-18页 |
| ·MSCs 的鉴定 | 第18页 |
| ·流式细胞仪检测细胞表面标记物表达 | 第18页 |
| ·体外多向分化潜能 | 第18页 |
| ·MSCs 向平滑肌细胞分化的体外培养及鉴定 | 第18-22页 |
| ·PDGF-BB 和 TGF-β1诱导 MSCs 分化为平滑肌细胞 | 第18-19页 |
| ·MSCs 向平滑肌细胞体外诱导分化后的鉴定 | 第19-22页 |
| ·RT-PCR 检测有关平滑肌细胞表型标记物 mRNA 的表达 | 第19-21页 |
| ·免疫细胞化学检测有关平滑肌细胞表型标记物蛋白的表达 | 第21-22页 |
| ·统计学分析 | 第22-23页 |
| 2 结果 | 第23-28页 |
| ·MSCs 形态学观察 | 第23页 |
| ·MSCs 的鉴定 | 第23-25页 |
| ·MSCs 表面标记物表达 | 第23-24页 |
| ·MSCs 体外多向分化潜能 | 第24-25页 |
| ·MSCs 向平滑肌细胞分化的体外培养及鉴定 | 第25-28页 |
| ·MSCs 诱导后的形态学变化 | 第25页 |
| ·RT-PCR 检测 a-SMA、SM22a、Calponin 和 SM-MHC mRNA 的表达 | 第25-26页 |
| ·免疫细胞化学检测 a-SMA、SM22a 和 Calponin 蛋白的表达 | 第26-28页 |
| 3 讨论 | 第28-31页 |
| 4 结论 | 第31-32页 |
| 第二部分 CXCR4/CXCR7 在 SDF-1 诱导大鼠骨髓间充质干细胞（MSCs）增殖、迁移中的作用及信号转导机制 | 第32-43页 |
| 1 材料和方法 | 第32-36页 |
| ·实验材料和仪器 | 第32-33页 |
| ·实验动物 | 第32页 |
| ·主要实验试剂 | 第32-33页 |
| ·主要实验仪器 | 第33页 |
| ·实验方法 | 第33-36页 |
| ·MSCs 分离培养、鉴定 | 第33页 |
| ·RT-PCR 检测不同浓度 SDF-1 诱导后 CXCR4、CXCR7 的表达 | 第33-34页 |
| ·实验分组 | 第34-35页 |
| ·MTT 法检测 SDF-1 诱导的 MSCs 增殖 | 第35页 |
| ·SDF-1 诱导的 MSCs 体外迁移 | 第35页 |
| ·统计学分析 | 第35-36页 |
| 2 结果 | 第36-39页 |
| ·MSCs 分离培养、鉴定 | 第36页 |
| ·RT-PCR 检测 MSCs 的 CXCR4 和 CXCR7 表达 | 第36页 |
| ·MTT 法检测 SDF-1 诱导的 MSCs 增殖 | 第36-37页 |
| ·SDF-1 诱导的 MSCs 体外迁移 | 第37-39页 |
| 3 讨论 | 第39-42页 |
| 4 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-49页 |
| 综述 | 第49-63页 |
| 参考文献 | 第57-63页 |
| 致谢 | 第63-65页 |
| 研究生在读期间发表的论文 | 第65-66页 |
| 附表 | 第66页 |
