| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 目录 | 第7-10页 |
| 第1章 引言 | 第10-12页 |
| 第2章 不同浓度 AngⅡ对 HSC 中 TLR4 表达的影响 | 第12-28页 |
| ·实验材料 | 第12-14页 |
| ·细胞株 | 第12页 |
| ·实验仪器 | 第12-13页 |
| ·实验药品及试剂 | 第13-14页 |
| ·试剂配制 | 第14-15页 |
| ·细胞培养主要试剂配制 | 第14页 |
| ·MTT 主要试剂的配制 | 第14页 |
| ·RT-PCR 主要试剂的配制 | 第14-15页 |
| ·Western Blot 主要试剂的配制 | 第15页 |
| ·实验方法 | 第15-22页 |
| ·细胞培养及传代 | 第15页 |
| ·细胞计数 | 第15-16页 |
| ·实验分组及细胞处理 | 第16页 |
| ·四甲基偶氮唑盐比色实验（MTT 比色法）观察细胞增殖 | 第16页 |
| ·酶联免疫吸附实验（ELISA）检测各组 TGF-β1 的表达量 | 第16-17页 |
| ·逆转录聚合酶链反应（RT-PCR）检测 TLR4 mRNA 的表达 | 第17-19页 |
| ·蛋白质免疫印迹（Western blot）检测 TLR4 蛋白的表达 | 第19-22页 |
| ·统计学分析 | 第22页 |
| ·结果 | 第22-25页 |
| ·AngⅡ对 HSC-T6 细胞增殖的影响 | 第22页 |
| ·AngⅡ对 HSC-T6 细胞上清液 TGF-β1 分泌的影响 | 第22-23页 |
| ·AngⅡ对 HSC-T6 细胞 TLR4 mRNA 表达的影响 | 第23-24页 |
| ·AngⅡ对 HSC-T6 细胞 TLR4 蛋白表达的影响 | 第24-25页 |
| ·讨论 | 第25-27页 |
| ·小结 | 第27-28页 |
| 第3章 TLR4 对 AngⅡ诱导 HSC 增殖活化的影响 | 第28-35页 |
| ·实验材料 | 第28-29页 |
| ·细胞株 | 第28页 |
| ·主要实验仪器 | 第28页 |
| ·主要实验药品及试剂 | 第28-29页 |
| ·主要试剂的配制 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-30页 |
| ·细胞基础实验 | 第29页 |
| ·实验分组与细胞处理 | 第29-30页 |
| ·ELISA 法测定各组细胞上清液 TGF-β1 的含量 | 第30页 |
| ·RT-PCR 法检测 TLR4 mRNA 的表达 | 第30页 |
| ·Western blot 法测定 TLR4 蛋白的表达 | 第30页 |
| ·统计分析 | 第30页 |
| ·结果 | 第30-32页 |
| ·缬沙坦与 MTS510 对 AngⅡ刺激 HSC-T6 细胞上清液 TGF-β1 分泌的影响 | 第30-31页 |
| ·缬沙坦与 MTS510 对 AngⅡ诱导 HSC-T6 TLR4mRNA 表达的影响 | 第31-32页 |
| ·缬沙坦与 MTS510 对 AngⅡ诱导 HSC-T6 TLR4 蛋白表达的影响 | 第32页 |
| ·讨论 | 第32-34页 |
| ·小结 | 第34-35页 |
| 第4章 结论和展望 | 第35-36页 |
| ·结论 | 第35页 |
| ·展望 | 第35-36页 |
| 致谢 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-40页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第40-41页 |
| 综述 | 第41-49页 |
| 参考文献 | 第47-49页 |
