| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 主要缩略词 | 第5-8页 |
| 引言 | 第8-10页 |
| 1 文献综述 | 第10-24页 |
| ·植物PCD研究进展 | 第10-12页 |
| ·植物PCD生物学特征 | 第10-11页 |
| ·形态学变化 | 第10页 |
| ·生物化学变化 | 第10-11页 |
| ·细胞凋亡的过程及机理 | 第11-12页 |
| ·启动阶段 | 第11页 |
| ·效应阶段 | 第11-12页 |
| ·清除阶段 | 第12页 |
| ·凋亡发展的中心问题 | 第12-16页 |
| ·线粒体在PCD中扮演重要的角色 | 第12-13页 |
| ·caspases蛋白酶家族 | 第13-14页 |
| ·活性氧形成是生物胁迫的早期结果 | 第14页 |
| ·Ca~(2+)在PCD中的生物学作用 | 第14-16页 |
| ·Ca~(2+)可激活胞内核酸酶 | 第15页 |
| ·钙调素(CaM)与Ca~(2+)结合发挥生物学效应 | 第15页 |
| ·可激活蛋白激酶C(PKC)参与PCD过程 | 第15页 |
| ·Ca~(2+)作为第二信使在细胞内发挥信息传递作用 | 第15-16页 |
| ·细胞凋亡检测技术进展 | 第16-19页 |
| ·凋亡形态学检测 | 第16-17页 |
| ·光学显微镜检测 | 第16页 |
| ·荧光显微镜检测 | 第16页 |
| ·共聚焦激光扫描显微镜检测 | 第16-17页 |
| ·电子显微镜检测 | 第17页 |
| ·染色质DNA断裂检测 | 第17页 |
| ·DNA ladder电泳检测 | 第17页 |
| ·TUNEL凋亡原位检测 | 第17页 |
| ·线粒体膜电位检测 | 第17-18页 |
| ·Caspase分光光度法检测 | 第18页 |
| ·细胞Ca~(2+)离子浓度检测 | 第18页 |
| ·流式细胞术检测 | 第18-19页 |
| ·种子老化劣变与程序性死亡 | 第19-22页 |
| ·种子老化劣变 | 第19页 |
| ·种子老化劣变的不可避免性 | 第19-20页 |
| ·种子老化劣变的形态学变化 | 第20页 |
| ·膜系统损伤和膜脂过氧化 | 第20-21页 |
| ·有机物质含量及种类的变化 | 第21页 |
| ·遗传物质变化 | 第21-22页 |
| ·立题依据与技术路线 | 第22-24页 |
| 2 家榆种子程序性死亡及细胞形态学观察 | 第24-32页 |
| ·实验材料 | 第24页 |
| ·实验方法 | 第24-26页 |
| ·实验结果 | 第26-29页 |
| ·小结 | 第29-32页 |
| 3 家榆种子ROS-类caspase-3途径信号通路研究 | 第32-38页 |
| ·实验材料 | 第32页 |
| ·实验方法 | 第32-33页 |
| ·实验结果 | 第33-37页 |
| ·小结 | 第37-38页 |
| 4 家榆种子钙离子流检测与分析 | 第38-42页 |
| ·实验材料 | 第38页 |
| ·实验方法 | 第38-39页 |
| ·实验结果 | 第39-41页 |
| ·小结 | 第41-42页 |
| 讨论 | 第42-43页 |
| 结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-56页 |
| 个人简介 | 第56-58页 |
| 导师简介 | 第58-60页 |
| 获得成果目录 | 第60页 |
| 致谢 | 第60页 |
