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棉花蔗糖合成酶基因(Sucrose Synthase 3)启动子结构、功能及其调控分析

摘要第1-6页
Abstract第6-11页
前言第11-26页
 1 棉花纤维发育相关基因的研究进展第11-19页
   ·概况第11-13页
   ·与棉纤维起始有关的基因第13-14页
   ·与棉纤维伸长相关的基因第14-16页
   ·棉纤维与拟南芥毛刺第16-18页
     ·MYB类转录因子第16-17页
     ·其他毛刺相关基因第17-18页
   ·赤霉素对棉花纤维细胞发育的影响第18-19页
 2 高等植物内含子对基因表达调控第19-23页
   ·内含子影响基因表达模式第19-20页
   ·内含子增强基因表达第20-21页
   ·内含子驱动基因表达第21-22页
   ·内含子调控基因表达机制研究展望第22-23页
 3 研究的目的意义第23-25页
 4 技术路线第25-26页
材料和方法第26-42页
 1 材料第26-27页
 2 方法第27-42页
   ·SuSy基因DNA全长及启动子的克隆第27-31页
     ·CTAB-PVP法提取棉花基因组DNA第27页
     ·PCR扩增SuSy基因DNA片段第27-28页
     ·基因组酶切并与Cassette连接第28-29页
     ·引物设计第29页
     ·PCR获取SuSy基因5'上游序列第29-30页
     ·PCR产物的克隆及测序第30页
     ·转化第30-31页
   ·序列分析第31页
   ·植物表达载体构建第31-36页
     ·启动子5'缺失系列载体构建第31-33页
     ·W-box突变载体构建第33-34页
     ·内含子相关载体构建第34-36页
       ·带有内含子的SuSy启动子全长片段获取第34-35页
       ·内含子插入到pBI121第35-36页
   ·重组农杆菌工程菌株的获得第36-37页
     ·农杆菌GV3101感受态细胞制作第36-37页
     ·农杆菌电击转化法第37页
     ·重组农杆菌工程菌株鉴定第37页
   ·拟南芥转化第37-39页
     ·拟南芥培养第37-38页
     ·农杆菌介导的DIP法转化拟南芥第38页
     ·拟南芥种子抗性筛选及分离比例计算第38页
     ·转基因T2代拟南芥培养第38-39页
   ·GA处理转基因拟南芥第39页
   ·GUS组织化学染色分析第39-42页
     ·试剂配制第39页
     ·直接染色第39页
     ·GUS荧光测定法第39-42页
结果与分析第42-65页
 1 棉花蔗糖合成酶基因DNA全长片段的获得及结构分析第42-43页
 2 棉花蔗糖合成酶启动子的克隆第43-44页
   ·棉花基因组DNA酶切第43页
   ·分离棉花蔗糖合成酶基因5'上游序列第43-44页
 3 序列分析第44页
 4 载体构建第44-51页
   ·启动子5'端缺失载体构建第44-47页
   ·-376到-165之间缺失载体构建第47-48页
   ·W-box突变载体构建第48-49页
   ·内含子相关载体构建第49-51页
 5 拟南芥转化及转基因植株筛选第51-52页
 6 启动子特性分析第52-61页
   ·启动子在拟南芥中的表达模式第52-54页
   ·不同长度启动子片段的表达分析第54-56页
     ·不同启动子区域对GUS表达组织特异性的影响第54-56页
     ·不同启动子区段对GUS活性的影响第56页
   ·赤霉素对启动子活性的调控作用第56-57页
   ·毛刺及花粉特异表达区域分析第57-59页
   ·-96bp处W-box对启动子活性的影响第59-60页
   ·启动子功能区分析第60-61页
 7 第一个内含子调控作用分析第61-65页
   ·内含子特异抑制基因在花粉中表达第61-62页
   ·内含子减弱基因的表达第62页
   ·GA通过内含子影响基因表达第62-64页
   ·35S启动子作用下内含子的调控作用第64-65页
讨论第65-71页
 1 棉花SuSy基因结构、启动子克隆及活性分析第65-66页
 2 决定启动子在纤维中活性的序列第66-67页
 3 W-box在启动子中的作用第67页
 4 GA对SuSy表达的调控第67-68页
 5 内含子在基因表达调控中的作用第68-69页
 6 对棉花蔗糖合成酶基因表达调控的推测第69-71页
结论第71-72页
参考文献第72-79页
致谢第79页

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