| 英文缩略词表 | 第1-6页 |
| 中文摘要 | 第6-7页 |
| 英文摘要 | 第7-8页 |
| 一、前言 | 第8-15页 |
| 二、实验研究 | 第15-39页 |
| (一) 实验材料 | 第15-16页 |
| 1. 实验动物 | 第15页 |
| 2. 主要试剂 | 第15-16页 |
| 3. 主要仪器 | 第16页 |
| 4. 实验用药 | 第16页 |
| (二) 实验方法 | 第16-18页 |
| 1. 动物分组 | 第16-17页 |
| 2. 模型制作及给药方法 | 第17页 |
| 3. 标本采集 | 第17-18页 |
| (三) 检测项目及方法 | 第18-26页 |
| 1. 大鼠踝关节肿胀度测定 | 第18页 |
| 2. 大鼠踝关节组织中组胺的含量测定 | 第18页 |
| 3. 大鼠踝关节组织中细胞因子IL-1β、IL-8、TNF-a检测 | 第18-19页 |
| 4. 大鼠踝关节组织中COX-2表达检测 | 第19页 |
| 5. 大鼠踝关节组织中VCAM-1表达检测 | 第19-20页 |
| 6. 大鼠踝关节组织中NF-κB表达检测 | 第20页 |
| 7. 大鼠踝关节组织中COX-2mRNA表达检测 | 第20-26页 |
| (四) 统计方法 | 第26页 |
| (五) 实验结果与分析 | 第26-39页 |
| 1. 大鼠一般情况 | 第26-27页 |
| 2. 各组大鼠踝关节肿胀度的变化 | 第27-28页 |
| 3. 各组大鼠踝关节组织中组胺的含量变化 | 第28-29页 |
| 4. 各组大鼠踝关节组织中细胞因子IL-1β的含量变化 | 第29-30页 |
| 5. 各组大鼠踝关节组织中细胞因子IL-8的含量变化 | 第30-31页 |
| 6. 各组大鼠踝关节组织中细胞因子TNF-a含量变化 | 第31-32页 |
| 7. 各组大鼠踝关节滑膜细胞中COX-2表达变化 | 第32-33页 |
| 8. 各组大鼠踝关节滑膜细胞VCAM-1表达变化 | 第33页 |
| 9. 各组大鼠踝关节滑膜细胞NF-κB表达变化 | 第33-34页 |
| 10. COX-2基因的克隆、表达以及序列分析 | 第34-39页 |
| 三、讨论 | 第39-70页 |
| (一) 祖国医学对痛风的认识 | 第39-48页 |
| 1. 痛风的症候特征 | 第39-40页 |
| 2. 痛风的病因病机 | 第40-42页 |
| 3. 痛风的治疗与方药 | 第42-48页 |
| (二) 现代医学对痛风的认识 | 第48-53页 |
| 1. 痛风性关节炎发病机制的认识 | 第48-50页 |
| 2. 痛风性关节炎的防治 | 第50-53页 |
| (三) 本课题立题及组方依据 | 第53-58页 |
| (四) 痛风性关节炎动物模型 | 第58页 |
| (五) 阳性对照药的选择 | 第58-60页 |
| (六) 复方豨莶草胶囊对痛风性关节炎的抗炎效应 | 第60-70页 |
| 1 对痛风性关节炎的肿胀度影响 | 第60-61页 |
| 2 对痛风性关节炎的组胺的影响 | 第61-62页 |
| 3 对痛风性关节炎的细胞因子的影响 | 第62-66页 |
| ·对痛风性关节炎IL-1β的影响 | 第63-64页 |
| ·对痛风性关节炎IL-8的影响 | 第64-65页 |
| ·对痛风性关节炎TNF-a的影响 | 第65-66页 |
| 4 对痛风性关节炎的COX-2表达的影响 | 第66-67页 |
| 5. 对痛风性关节炎的VCAM-1表达的影响 | 第67-68页 |
| 6 对痛风性关节炎的NF-κB表达的影响 | 第68-70页 |
| 四、结论 | 第70-71页 |
| 五、存在的问题及展望 | 第71-72页 |
| (一) 关于痛风性关节炎作用机理的探讨 | 第71页 |
| (二) 关于复方稀签草胶囊抗痛风物质基础研究 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-83页 |
| 附件一:图片 | 第83-90页 |
| 附件二:学习期间所发表的论文 | 第90-93页 |
| 附录五:个人简历 | 第93页 |
