| 缩略词 | 第1-9页 |
| 引言 | 第9-16页 |
| 第一部分 葡萄卷叶病毒（GLRaV-Ⅲ）RT-PCR 检测体系的建立、优化及病毒特异片段克隆测序研究 | 第16-29页 |
| 1 材料与方法 | 第16-20页 |
| ·试验材料 | 第16-17页 |
| ·植物材料 | 第16页 |
| ·RNA 提取试剂 | 第16页 |
| ·RT-PCR 试剂及特异引物 | 第16-17页 |
| ·菌种与质粒 | 第17页 |
| ·酶及试剂 | 第17页 |
| ·试验方法 | 第17-20页 |
| ·总RNA 的提取 | 第17页 |
| ·总RNA 含量、纯度及完整性的检测 | 第17-18页 |
| ·RT | 第18页 |
| ·PCR 扩增 | 第18页 |
| ·cDNA 片段的回收纯化 | 第18页 |
| ·特异DNA 片段的克隆与测序 | 第18-20页 |
| ·构建重组质粒 | 第18-19页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第19页 |
| ·重组质粒的转化与培养 | 第19页 |
| ·重组质粒的回收与纯化 | 第19-20页 |
| ·重组质粒的酶切鉴定以及cDNA 片段的序列测定 | 第20页 |
| 2 结果与分析 | 第20-27页 |
| ·果树组织中总RNA 完整性及纯度检验 | 第20-21页 |
| ·果树组织中总RNA 完整性检验 | 第20页 |
| ·果树组织中总RNA 的提取纯度 | 第20-21页 |
| ·GLRaV-Ⅲ的RT-PCR 检测体系的建立及优化 | 第21-26页 |
| ·GLRaV-Ⅲ的RT-PCR 检测体系的建立 | 第21-22页 |
| ·GLRaV-Ⅲ的RT-PCR 检测体系的优化 | 第22-26页 |
| ·特异DNA 片段的克隆 | 第26页 |
| ·GLRaV-Ⅲ部分CPgene cDNA 片段的序列分析 | 第26-27页 |
| 3 讨论 | 第27-29页 |
| ·关于 RNA 的提取 | 第27页 |
| ·影响 RT-PCR 扩增的因素及反应条件 | 第27-29页 |
| ·PCR 循环参数的选定 | 第28页 |
| ·PCR 反应体系 | 第28-29页 |
| 4 结论 | 第29页 |
| 第二部分 樱桃砧木 Colt 小茎尖培养体系的建立 | 第29-38页 |
| 1 试验材料和方法 | 第29-31页 |
| ·试验材料 | 第29页 |
| ·试验方法 | 第29-30页 |
| ·试材的预处理和接种 | 第29-30页 |
| ·培养基及培养条件 | 第30页 |
| ·无菌培养物建立阶段 | 第30页 |
| ·基本培养基的筛选 | 第30页 |
| ·植物生长调节剂的种类与浓度 | 第30页 |
| ·试管苗增殖培养 | 第30-31页 |
| ·不同种类激素的浓度组合 | 第30页 |
| ·pH | 第30-31页 |
| ·蔗糖浓度 | 第31页 |
| ·试管苗生根 | 第31页 |
| 2 结果与分析 | 第31-35页 |
| ·无菌培养物的建立 | 第31-33页 |
| ·不同培养基对茎尖萌发的影响 | 第31-32页 |
| ·植物生长调节剂对茎尖萌发的影响 | 第32-33页 |
| ·试管苗增殖 | 第33-35页 |
| ·激素种类和浓度对增殖的影响 | 第33-34页 |
| ·培养基pH 值对茎尖增殖的影响 | 第34页 |
| ·糖浓度对增殖的影响 | 第34-35页 |
| ·试管苗生根 | 第35页 |
| 3 讨论 | 第35-37页 |
| ·基本培养基的影响 | 第35-36页 |
| ·激素的影响 | 第36页 |
| ·影响组培苗增殖和生长的其他因素 | 第36-37页 |
| 4 结论 | 第37-38页 |
| 致谢 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-44页 |
| 附图 | 第44-46页 |
| 作者简介 | 第46页 |
