| 第一章 抗氧化蛋白家族的研究进展和自然杀伤细胞增强因子的研究进展 | 第1-19页 |
| 第一节 Prx家族的分类概况 | 第8-11页 |
| 1 植物的Prx | 第9页 |
| 2 哺乳动物的Prx | 第9-10页 |
| 3 寄生虫类的Prx | 第10-11页 |
| 3．1 蠕虫的Prx | 第11页 |
| 3．2 原虫的Prx | 第11页 |
| 第二节 Prx蛋白家族的功能及作用机制 | 第11-16页 |
| 1 植物 Prx蛋白家族的功能 | 第12-13页 |
| 1．1 生理作用 | 第12-13页 |
| 1．2 在烷基过氧化物还原中的作用 | 第13页 |
| 1．3 在信号传导中的作用 | 第13页 |
| 2 哺乳动物 Prx蛋白家族的功能 | 第13-15页 |
| 2．1 参与细胞增殖分化 | 第13-14页 |
| 2．2 参与信号转导 | 第14页 |
| 2．3 抗氧化作用 | 第14-15页 |
| 2．4 其他功能 | 第15页 |
| 3 Prx家族的作用机制 | 第15-16页 |
| 第三节 自然杀伤细胞增强因子(NKEF) | 第16-19页 |
| 第二章 牙鲆自然杀伤细胞增强因子基因的克隆及序列分析 | 第19-36页 |
| 引言 | 第19-20页 |
| 第一节 牙鲆肝脏总 RNA的提取 | 第20-22页 |
| 1 实验材料 | 第20页 |
| 1．1 牙鲆及肝脏组织 | 第20页 |
| 1．2 试剂和器材 | 第20页 |
| 2 实验方法 | 第20-21页 |
| 3 实验结果 | 第21-22页 |
| 第二节 Smart-RACE法扩增牙鲆 NKEF基因 | 第22-25页 |
| 1 实验材料 | 第22页 |
| 2 实验方法 | 第22-24页 |
| 2．1 引物设计 | 第22页 |
| 2．2 第一链cDNA的合成 | 第22-23页 |
| 2．3 牙鲆 NKEF基因的cDNA末端快速扩增 | 第23-24页 |
| 2．4 电泳检测 RACE产物 | 第24页 |
| 3 实验结果 | 第24-25页 |
| 第三节 RACE产物的回收纯化 | 第25-26页 |
| 1 实验材料 | 第25页 |
| 2 实验方法 | 第25页 |
| 3 实验结果 | 第25-26页 |
| 第四节 目的片段的连接转化及测序 | 第26-34页 |
| 1 实验材料 | 第26页 |
| 2 实验方法 | 第26-29页 |
| 2．1 回收产物的连接 | 第26-27页 |
| 2．2 感受态细菌的制备 | 第27页 |
| 2．3 连接产物的转化 | 第27-28页 |
| 2．4 质粒的小量制备 | 第28页 |
| 2．5 双酶切检测 | 第28-29页 |
| 2．6 测序 | 第29页 |
| 3 实验结果 | 第29-34页 |
| 3．1 双酶切结果 | 第29-30页 |
| 3．2 测序结果 | 第30-32页 |
| 3．3 核苷酸序列拼接以及推测出的NKEF氨基酸序列 | 第32-33页 |
| 3．4 NKEF氨基酸序列比对及同源性分析 | 第33-34页 |
| 第五节 小结 | 第34-36页 |
| 第三章 牙鲆 NKEF基因的表达分析 | 第36-42页 |
| 第一节 牙鲆 NKEF基因的表达 | 第36-40页 |
| 1 实验材料 | 第36页 |
| 2 实验方法 | 第36-38页 |
| 2．1 脂多糖接种实验 | 第36页 |
| 2．2 总 RNA的提取 | 第36页 |
| 2．3 引物设计 | 第36-37页 |
| 2．4 第一链cDNA的合成 | 第37页 |
| 2．5 PCR扩增 | 第37-38页 |
| 3 实验结果 | 第38-40页 |
| 3．1 NKEF基因在牙鲆不同组织中的表达 | 第38页 |
| 3．2 NKEF基因在牙鲆不同发育时期的表达 | 第38-39页 |
| 3．3 经脂多糖诱导后 NKEF基因在组织中的表达变化 | 第39-40页 |
| 第二节 小结 | 第40-42页 |
| 参考文献 | 第42-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
